Приготовление толстой капли крови

Практические навыки

По сестринскому делу

при инфекционных заболеваниях
НАИМЕНОВАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ:

Приготовление мазка крови

Оснащение: перчатки; фартук; нарукавники; хирургический халат; маска; очки; стерильный материал; стерильные стекла в крафт-упаковке; копье-скарификатор; антисептик; чашка Петри (пенал для сушки стекол); лоток для отработанного материала; емкости с дезинфектантом; бланк направления; стеклограф.

Ход манипуляции:

Подготовительный этап как для инъекций.

Основной этап: установить доверительные отношения с пациентом. Обработать руки антисептиком. Тремя пальцами (большим, указательным и средним пальцем) левой руки захватить 4 палец не рабочей руки пациента, так чтобы ноготь большого пальца шел к ногтю пальца пациента. Взять два шарика смоченных антисептиком: первым обработать две дистальные фаланги пальца пациента, шарик сбросить в лоток отработанного. Вторым обработать подушечку четвертого пальца, шарик положить в руку пациента. Копье-скарификатор берут в правую руку и резким движением делают прокол, располагая копье-скарификатор перпендикулярно пальцевому рисунку, справа или слева от верхушки четвертого пальца, копье-скарификатор сбрасывают в лоток отработанного. Выступившую каплю вытирают сухим шариком, шарик сбрасывают в лоток отработанного. Стекло захватывают правой рукой между большим и указательными пальцами. Подносят к выступившей капле, не касаясь пальца сверху, и касаются капли на расстоянии 0,5 – 1,5 см от края стекла. Стекло переворачивают каплей к верху и выкладывают на стол. Пациенту прикладывают к ранке шарик с антисептиком и отпускают. Стекло берут в левую руку между большим и указательным пальцем, правой рукой берут второе стекло с шлифованным краем и устанавливают его в каплю под углом 45°, делают покачивающие или потирающие движения для более полного распределения капли по краю стекла, затем плотно прижимая стекло к стеклу проводят вперед (если капля располагалась 1,5 см от края) и назад для получении тонкого мазка крови. Стекло со шлифованным краем сбрасывают в лоток отработанного. Стекло с мазком помечают с обратной стороны стеклографом, помещают в полуприкрытую чашку Петри или пенал для высушивания. Заполняют направление, стекло в лабораторию доставляют в пенале или завернутым в крафт-бумагу.

Заключительный этап.

НАИМЕНОВАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ:

Бактериологическое исследование кала

На иерсиниозную инфекцию.

ПОКАЗАНИЯ:подозрение на иерсиниозную инфекцию, острые кишечные инфекции или обследование на них; бактерионосители.

МАТЕРИАЛЬНОЕ ОБЕСПЕЧЕНИЕ: герметично закрытые стерильные флаконы с деревянной палочкой, герметично закрытые стерильные пробирки с тампонами на металлических или деревянных стержнях; флакон с консервантом (30% раствор глицерина и 70% частей физиологического раствора); физиологический раствор; бикс для транспортировки; пеленка, штатив, стеклограф; манипуляционный столик; перчатки, фартук; судно, вощеная бумага; бланк направление формы № 204-у.

ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ ВЫПОЛНЕНИЯ:

1. При иерсиниозной инфекции исследование нативного кала проводят 3 дня подряд.

Метод взятия нативного кала на иерсиниозную инфекцию.

1. Подготовить судно для забора материала (сполоснуть судно от дезсредств, на дно положить лист вощеной бумаги).

2. Стерильной петлей или шпателем возьмите испражнения (у детей грудного возраста с пеленки) из судна.

3. Кал в количестве 2-3 гр поместите в стерильный флакон. Кал лучше доставить в лабораторию сразу после его сбора.

4. Если это не возможно, то залейте кал консервантом в объеме, в 2-3 раза превышающем объем кала.

5. Закройте флакон стерильной резиновой пробкой.

6. До доставки в лабораторию флакон храните в холодильнике.

7. Снимите перчатки (погрузите в дез р-р).

8. Вымойте и просушите руки.

9. Оформите направление (формы № 204-у).

10. Поместите пробы в бикс, избегайте возможного опрокидывания собранного материала. Направления поместите в пакет и положите в бикс.

ПРИМЕЧАНИЕ:

1. Для исследования берутся свежевыделенные испражнения, содержащие слизисто-гнойные комочки, без крови.

2. Испражнения из последней, более жидкой, порции содержат большее количество возбудителей.

3. Исследования лучше проводить до начала этиотропной терапии.

«Техника выполнения в/в инъекций и сбора крови для серологического исследования»

Противопоказания:поражение кожи и подкожно-жировой клетчатки любого характера в предполагаемом месте инъекции, флебит пунктируемой вены.

Место введения:поверхностныевены локтевого сгиба предплечья, кисти, области голеностопного сустава, свода черепа.

Подготовительный этап:

1. См. инструкцию «Приготовление рабочего места и рук для работы со шприцами»

2. Подготовка пациента:

-психологическая;

-уточнить индивидуальную чувствительность к препарату;

-сообщить время и место проведения следующей инъекции.

3. Предложить пациенту лечь, либо сесть. Осмотреть предполагаемое место инъекции и обследовать его пальпаторно.

Последовательность выполнения:

1. Под локоть пациента положить клеёнчатую подушечку.

2. Определить пульс на лучевой артерии.

3. Наложить резиновый жгут (на рубашку или салфетку) выше места инъекции на 10-12 см. Завязать жгут так, чтобы его свободные концы были направлены вверх, а петля – вниз.

Проверить пульс на лучевой артерии. Попросить пациента несколько раз сжать и разжать кулак.

4. Обработать руки в перчатках антисептиком для рук.

5. Взять рукой 3 стерильных ватных шарика и смочить их антисептиком.

6. Обработать место инъекции: первым шариком – широко, вторым – узко, движениями от периферии к центру снизу вверх, одновременно проверяя наполнение вен. Третий шарик оставить в левой руке, зажав его между 4-ым и 5-ым пальцами. Использованные шарики сбросить в ёмкость для отработанных шариков. Подождать пока место инъекции не подсохнет и подействует антисептик.

7. Взять шприц в левую руку, снять колпачок с иглы шприца однократного применения.

8. Переложить шприц в правую руку, указательный палец положить на канюлю иглы, остальными охватить цилиндр сверху. Попросить больного сжать кулак.

9. Большим пальцем левой руки натянуть кожу в области инъекции и фиксировать вену.

10. Не меняя положения шприца в руке, держа иглу срезом вверх (почти параллельно коже), проколоть кожу и расположить иглу параллельно вене.

11. Продолжая фиксировать вену, слегка изменить направление иглы, осторожно пунктировать вену и продвинуть иглу по ходу вены. Должно возникнуть ощущение попадания «в пустоту».

12. Подтянуть поршень на себя левой рукой. Появление в шприце крови свидетельствует о том, что игла находится в вене.

13. Попросить больного разжать кулак.

14. Развязать жгут левой рукой.

15. Повторно убедиться, что игла введена в вену потянув поршень на себя, и набрать 5 – 10 мл крови.

16. Прижав к месту инъекции третий шарик, смоченный антисептиком, извлечь иглу, шарик оставить на месте инъекции на 3-5 мин., затем сбросить его в ёмкость для отработанных шариков.

17. При пункции вен локтевого сгиба согнуть руку в локтевом суставе. Положить на место инъекции сухой стерильный шарик (при необходимости наложить давящую повязку). Поинтересоваться самочувствием пациента.

18. Перенести кровь из шприца в сухую чистую пробирку: не снимая иглы, полностью погрузить канюлю шприца в пробирку и аккуратно медленно по стенке пробирки выпустить кровь из шприца в пробирку.

19. Заполнить направление на серологическое исследование, в лабораторию может быть доставлена цельная кровь или сыворотка крови полученная центрифугирования или методом отстаивания.

20. Если применяется химический метод дезинфекции, то промыть шприц в первой ёмкости дезинфектанта, набрав 1-2 мл и выпустить этот раствор через иглу. Во второй ёмкости заполнить шприц чистым раствором дезинфектанта. После чего снять иглу выделенным для этой цели пинцетом и поместить в отдельную ёмкость на время обеззараживания, определённое инструкцией по применению данного дезинфектанта. Дезинфекция шприцов проводится во второй ёмкости в разобранном виде.

Экспозиция отсчитывается с момента выполнения последней манипуляции.

Если для дезинфекции изделий одноразового использования применяют «грязный» автоклав (физический метод дезинфекции), то после инъекции иглу закрыть защитным колпачком, после чего поместить в специально отведённую промаркированную ёмкость с полиэтиленовым мешком внутри. Туда же сбрасываются отработанные марлевые салфетки и ватные шарики.

После проведения всех инъекций мешок завязать. Ёмкость закрыть крышкой и отнести в автоклав для дезинфекции. Мешки с отработанным материалом помещают в биксы, а биксы в «грязный» автоклав.

Режим дезинфекции:

- давление пара 0,5 атм.;

- температура = 110⁰ С;

- время 20 минут.

Ёмкости внутри и снаружи обрабатываются раствором дезинфектанта. В отделении вложить новый полиэтиленовый мешок.

Примечание:

Кровь берут натощак

НАИМЕНОВАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ:

«Посев мочи».

ПОКАЗАНИЯ: оценка бактериологического состава мочи; общее обследование пациента.

ОБОРУДОВАНИЕ: направление на обследование, стерильная емкость 150-200 мл.

ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЬ ВЫПОЛНЕНИЯ:

1. Накануне обследования медсестре необходимо приготовить широкогорлую посуду (заказать в лаборатории).

2. Приготовить этикетку: Посев мочи

Ф.И.О. больного, отделение, палата, дата,

№ медицинской карты, подпись медсестры.

3. Объяснить цели исследования и предупредить больного:

А) накануне воздержаться от больших количеств моркови и свеклы, от приема мочегонных средств, амидопирина, сульфаниламидов.

Б) не менять питьевой режим за сутки до анализа.

В) провести туалет наружных половых органов сразу после пробуждения (если у пациентки в этот момент менструация, посоветуйте ей закрыть область влагалища ватно-марлевым тампоном).

Г) собрать утреннюю мочу (среднюю порцию –20-50 мл мочи). У мужчин сбор мочи можно проводить естественным способом, выделить первую струю мочи в унитаз, затем задержать мочеиспускание, взять емкость и собрать в нее 20-50 мл мочи, после чего завершить мочеиспускание в унитаз. Емкость оставить в санитарной комнате. У женщин сбор мочи лучше осуществлять с помощью катетера.

4. Медсестра отправляет собранную мочу в клиническую лабораторию сразу же после сбора в теплом виде.

5. В лаборатории проводится центрифугирование мочи, и посев осадка.

НАИМЕНОВАНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ: РЕКТОРОМАНОСКОПИЯ.

Ректороманоскопия – это эндоскопическое исследование прямой и начальной части сигмовидной кишки с помощью специального прибора ректороманоскопа, который состоит из набора трубок различной длины и диаметра, оптической системы и баллона для нагнетения воздуха в прямую кишку.

ПОКАЗАНИЯ: диагностика заболеваний прямой кишки и сигмовидной при наличии симптомов, указывающих на возможность этих заболеваний; диагностика заболеваний прямой и сигмовидной кишки на морфологическом уровне; оценка результатов медикаментозного и хирургического лечения прямой и сигмовидной кишки; для проведения диспансерных и профилактических осмотров.

ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ: общее тяжелое состояние пациента; острые воспалительные и нагноительные процессы в области заднего прохода; рубцовые сужения прямой кишки.

ПОДГОТОВКА:

1. За 3 дня до исследования пациенту назначают диету, в которой исключают продукты питания, вызывающие усиленное брожение и газообразование в кишечнике.

2. Накануне исследования, легкий ужин (яйцо, кусочек белого хлеба, чай) и две очистительные клизмы с интервалом 1-2 часа. Утром также 2 клизмы с перерывом в 1-2 часа. Последняя клизма ставится за 3 часа до исследования.

3. Непосредственно перед исследованием пациент должен опорожнить мочевой пузырь.

4. Положение больного – коленно-локтевое, чтобы ступни свисали за край кушетки или перевязочного стола.

5. Пациента закрывают простыней, оставив открытым только заднепроходное отверстие.

ПРОВЕДЕНИЕ МАНИПУЛЯЦИИ:

1. Перед каждой ректороманоскопией участвующий в ее проведении персонал должен провести гигиеническую обработку рук кожным антисептиком и надеть обеззараженные перчатки.

2. Сборка ректороманоскопа (жесткого) осуществляется медицинской сестрой непосредственно перед исследованием.

3. Выставить на стол стерильный лоток, извлечь части ректороманоскопа из укладки, положить на стерильный лоток.

4. Подключить переходной трансфорамор к сети.

5. В паз головки ручки ректороманоскопа вкрутить лампочку на световоде, проверить освещение.

6. Подсоединить тубус ректороманоскопа, так чтобы цифры находились сверху.

7. В просвет комплекса (ручка ректороманоскопа – тубус ректороманоскопа) вставить обтуратор, зафиксировать винт бегунка, так чтобы олива выступала на 0,5 см за пределы тубуса.

8. Смазать тубус ректороманоскопа стерильным вазелиновым маслом на 10 – 15 см.

9. Подготовить окуляр и линзу ректороманоскопа, подать врачу перчатки для исследования.

10. Обработка ректороманоскопа проводится согласно приказа № 167.

11. После использования ректороманоскопа проводят предварительную очистку видимые загрязнения удаляют с наружной поверхности путем протирания тканевой или марлевой салфеткой, смоченной в растворе средства, в направлении от окуляра к дистальному концу.

12. Ректороманоскоп разобрать, погрузить в емкость с раствором, используемым для очистки ректороманоскопа, обеспечивая контакт всех поверхностей с раствором. Мыть, используя салфетки, щетку. Внутренний канал мыть, используя салфетки и специальные щетки.

13. Ректороманоскоп и инструменты к нему извлечь из раствора чистым инструментом, промыть питьевой водой.

14. Загрязненный моющий раствор вылить в емкость для биологических загрязнений.

15. После предварительной очистки провести предстерилизационную очистку, в специально выделенном для этих целей помещении с приточно-вытяжной вентиляцией.

16. Ректороманоскоп и инструменты к нему погрузить в емкость с раствором средства, добиваясь полного контакта раствора с поверхностью изделия, используя салфетки и специальные щетки.

17. После предстерилизационной очистки провести отмывание остатков средства проточной питьевой водой. Все промывные жидкости перед сбросом в канализацию подлежат обеззараживанию.

18. Высушить ректороманоскоп и инструменты к нему на чистой простыни, провести пробу на скрытую кровь.

19. Провести дезинфекцию соответствующими растворами с полным погружением ректороманоскопа и его инструментов, добиваясь полного контакта раствора с поверхностью изделия.

20. В течение экспозиционного времени, используя стерильный инструментарий, переворачивать ректороманоскоп для более полного омывания и контакта со дезинфицирующим раствором.

21. После экспозиции раствор слить, промыть ректороманоскоп стерильной дистилированной водой, затем 70° этиловым спиртом.

22. Просушить, уложить и хранить в асептических условиях.

ПРИМЕЧАНИЕ: При задержке стула пациенту назначают 30-60 г касторового масла.

Бактериологическое исследование кала.

Показания:острые кишечные инфекции или обследование на них;

дети до 2-х лет поступающие на лечение в стационар; родители, находящиеся в стационаре для ухода за больным ребенком; бактерионосители.

Материальное обеспечение:

- герметично закрытые стерильные флаконы с деревянной палочкой, герметично закрытые стерильные пробирки с тампонами на металлических или деревянных стержнях;

- флакон с консервантом (30% раствор глицерина и 70% частей физиологического раствора)

- физиологический раствор;

- чашка Петри с питательной средой;

- стерильный флакон или пробирка с жидкой питательной средой закрыты герметично;

- бикс для транспортировки;

- пеленка, штатив, стеклограф;

- манипуляционный столик;

- перчатки, фартук;

- судно, вощеная бумага;

- бланк направление ф.№ 204-у.

Последовательность выполнения:

1. Наденьте фартук, вымойте и просушите руки, наденьте перчатки.

2. Обработайте дезраствором манипуляционный столик.

3. Вымойте и просушите руки, поставить все необходимое на манипуляционный столик.

4. Стеклографом на пробирке (флаконе) поставьте номер, соответствующий номеру в направлении.

5. Установите пробирку в штатив. Подготовьте кушетку.

6. Уложить пациента на левый бок с приведенными к животу ногами (детей раннего возраста – на спину с приведенными к животу ногами).

7. Извлеките из пробирки стерильный тампон и смочите его в физиологическом растворе или консерванте.

8. Левой рукой раздвиньте ягодицы. Правой рукой осторожно, без усилия, вращательным движением введите в прямую кишку ватный тампон или металлическую петлю (детям раннего возраста на глубину 3-4 см, старшим детям и взрослым на 6-8 см).

9. Извлеките тампон.

10. Поместите петлю (тампон) в сухую стерильную пробирку, не касаясь краев. До доставки в лабораторию пробирку поместите в холодильник, но не более чем на 2 часа.

11. При необходимости более длительного хранения необходимо налить в пробирку 3-5 мл консерванта и в него поместите консервант до доставки в лабораторию пробирку хранить в холодильнике.

Метод взятия нативного кала

1. Подготовить судно для забора материала (сполоснуть судно от дезсредств, на дно положить лист вощеной бумаги)

2. Стерильной петлей или шпателем возьмите испражнения (у детей грудного возраста с пеленки) из судна.

3. Кал в количестве 2-3 гр. поместите в стерильный флакон. При сборе материала на вирусологическое исследование флакон поместите в морозильную камеру. В лабораторию доставьте в контейнере с хладогенами.

4. Залейте кал консервантом в объеме, в 2-3 раза превышающем объем кала.

5. Закройте флакон стерильной резиновой пробкой.

6. До доставки в лабораторию флакон храните в холодильнике.

7. При посеве на плотную питательную среду (необходимо подогреть до температуры тела), чашку Петри приоткройте и зигзагообразными движениями проводите посев материала. Нельзя нарушать целостность среды и оставлять комки кала на питательной среде. Чашку Петри закройте и поставьте в термостат.

8. При посеве на жидкую питательную среду: в пробирку со средой вносят петлю и взбалтывают в питательной среде, петлю извлекают, пробирку закрывают.

9. Снимите перчатки (погрузите в дезраствор).

10. Вымойте и просушите руки.

11. Оформите направление (ф.№204-у)

12. Поместите пробы в бикс, избегайте возможного опрокидывания собранного материала. Направления поместите в пакет и положите в бикс.

Примечания:

n для исследования берутся свежевыделенные испражнения, содержащие слизисто-гнойные комочки, без крови.

n испражнения из последней, более жидкой, порции содержат большее количество возбудителей.

n Исследования лучше проводить до начала этиотропной терапии.

ВЗЯТИЕ КРОВИ ИЗ ВЕНЫ ДЛЯ ПОСТАНОВКИ

БИОЛОГИЧЕСКОЙ ПРОБЫ НА БОТУЛОТОКСИН

Оснащение: одноразовые шприцы 20,0, иглы, стерильные ватные шарики в крафтупаковке, жгут, клеенчатая подушечка, антисептик для обработки кожи, стерильные пробирки с резиновой пробкой, цитрат натрия, бланки направления, фартук, халат для инъекций, маска, очки, резиновые перчатки, емкости с антисептиком для проведения обеззараживания шприцов, шариков, ветошь, микропипетка.

Техника выполнения.

1. Выполнить внутривенную инъекцию и набрать 10 – 20 мл крови.

2. Поместить шприц с кровью на стерильный лоток.

3. Перенести кровь из шприца в пробирку с резиновой пробкой, кровь выпускать медленно по стенке пробирки, не снимая иглы и полностью погружая канюлю шприца в пробирку.

4. Для доставки цитратной крови в лабораторию в нее добавляют цитрат натрия в соотношении 1:3.

5. Если доставляется кровь в виде сыворотки (ее получают или методом центрифугирования или отстаивания), сыворотку переносят микропипеткой из пробирки с центрифугатом в стерильную сухую пробирку с резиновой пробкой.

6. До доставки кровь и сыворотку хранят в холодильнике, последнюю не более 1 дня.

7. Особенности оформления направления в лабораторию на ботулотоксин:

кроме обычных пунктов обязательно указать дату заболевания, дату и

время забора крови, дату и время введения противоботулинической

сыворотки пациенту, подробно описать подозрительные пищевые

продукты употреблявшиеся пациентом на кануне заболевания, полностью

написать фамилию доктора направившего материал на исследование и

фамилию м/с осуществлявшей забор крови у пациента.

Забор материала на вирусологическое исследование.

Основным материалом является кровь, фекалий, отделяемое носа, глотки, коньюктивы, секционный материал.

Фекалии. Производят с помощью деревянных палочек в количестве 1-3 г в чистые пенициллиновые флаконы из судна при соблюдении правил асептики. Флаконы закрывают резиновыми пробками и маркируют. Материал до доставки может хранится до 24 часов в бытовом холодильнике при 4 градусах Цельсия. При необходимости более длительного хранения замораживают в морозилке.

Сыворотка крови для серологического исследования: используют парные сыворотки. Заборы проводят на 1-2 день и период реконвалисценции (на 13-14 день). Кровь берут натощак из вены или пальца в объеме 1 мл. Кровь помещают в термостат, затем центрифугируют.

Вирусология крови. Сгусток крови, отделившийся от сыворотки, замораживают и направляют лабораторию, в полиэтиленовом пакете, запаянном или пенициллиновом флаконе с резиновой пробкой.

Отделяемое слизистой носа и глотки. Берется сухим ватным тампоном, которые помещают в пенициллиновый флакон с 3-5 мл среды. Среды: р-р Хейнкса, среда 199, бульон из бычьего сердца или любой фосфатно-буферный р-р с 10% инактивированной сывороткой цыплят, кролика, лошади. Среда хранится в расфасованном виде, замороженная. Антибиотики добавляют в р-р фосфатно-буферный перед взятием или после взятия материала в количествах (1000 ЕД пенициллина, 500 ЕД стрептомицина, 20 ЕД нистатина на 1 мл среды).

Носоглотка. Ватные тампоны (нос и глотка) помещают в один флакон со средой, где их оставляют (отламывают о край флакона). Флакон закрывают резиновой пробкой и помещают в заморозку – 20 градусов и ниже.

На РИФ реакцию:

1. Очистить тампоном носовую полость.

2. Осторожными движениями ввести находящийся на жесткой проволоке тампон и несколько раз поскоблить, чтобы снять эпителий носовой стенки.

3. Тампон с помощью пинцета снимают и погружают в р-р хлорида натрия 0,9%, хранить не более 3-4 часов.

ТРАНСПОРТИРОВКА: в изотермических сумках, контейнерах с хлодогенами. Каждая проба отдельно пронумерована и внесена в сопроводительный документ, вирусологическое направление.

МЕРОПРИЯТИЯ ПРИ ООВИ.

В организации приема и госпитализации больных или подозрительных на ООВИ необходимо предусмотреть два основных варианта.

1. Больной поступает в инфекционный стационар с установленным диагнозом ООВИ или с подозрением на это заболевание.

Правила транспортировки: изоляция места размещения больного в машине, сопровождающий персонал одет в противочумные костюмы 1 типа. В таких случаях:

- поступивший больной в приемном покое не осматривается, а направляется в специально оборудованный бокс, где поводится регистрация, опрос, осмотр, обследование и лечение.

- На специально отведенной площадке, сопровождающие больного лица, осуществляют заключительную дезинфекцию транспорта и носилок.

- Сопровождающие больного лица в специально отведенном санитарном пропускнике (дезстанция, СЭС) снимают защитный костюм, замачивают в дезрастворе и после санитарной обработки возвращаются к месту работы. В последующем по месту работы за этими лицам устанавливается медицинское наблюдение в течение 21 дня.

2. Диагноз ООВИ или подозрение на них устанавливается в приемном покое инфекционного стационара. При этом должны быть приняты следующие меры:

- Врач приемного покоя немедленно прекращает прием больных и обеспечивает изоляцию больного на месте.

- Персонал надевает защитные костюмы 1 типа.

- Ставится в известность администрация стационара о выявлении больного ООВИ.

- По решению администрации больной переводится в специально оборудованный бокс (если позволяют условия, он может быть оставлен для наблюдения и лечения в приемном покое).

- Транспорт, доставивший больного, подвергается тщательной заключительной дезинфекции.

- Лица, сопровождавшие больного, обсервируются на базе инфекционного стационара.

3. В целях снижения риска заражения медицинского персонала необходимо соблюдать следующие меры:

3.1 Изолятор (бокс) должен иметь предбоксник, который предназначен для входа и выхода медицинского и обслуживающего персонала, для одевания и раздевания защитной одежды; в предбокснике должны находится умывальник, большое зеркало, запас защитной одежды, предметов ухода за больным, медикаментов, дезинфицирующих растворов.

3.2 Больной должен пользоваться подкладным судном. Туалет используется только для смыва обеззараженных выделений больного (мокрота, моча, испражнения и др.) заливаются в двухкратном объеме 10% раствором лизола на 4 часа или засыпают на 2 часа сухой хлорной известью (из расчета 200 г.на литр выделений). Можно использовать 20% раствор хлорной извести. Двухсуточные запасы дезрастворов хранятся в туалетной комнате.

3.3 В случае смерти заболевшего труп, завернутый в клеенку и простыню, смоченную 5% лизолом, на носилках переносится в морг. Вскрытие трупа и отбор проб проводят в соответствии с методическими указаниями «Вскрытие умерших от особо опасных инфекций и забор материала для лабораторных исследований».

Заключительная дезинфекция в изоляторе проводится следующим образом: 10% раствором лизола обрабатываются потолки, стены, пол из расчета 0,5 литра на 1 метр квадратный поверхности, постельные принадлежности подвергаются камерной дезинфекции. После побелки и другого косметического ремонта изолятор может быть использован для размещения других больных.

3.4 Персонал больницы должен находится на казарменном положении и при общении с больным одевать противочумный костюм.

ЗАБОР МАТЕРИАЛА

ПРИ ИССЛЕДОВАНИИ НА ХОЛЕРУ

Забор материала от больных осуществляется медицинским персоналом лечебного учреждения немедленно при выявлении больного и до начала лечения антибиотиками. Руководитель несет ответственность за правильность отбора проб, хранения и их доставки в лабораторию.

В зависимости от конкретных задач и условий материал может быть направлен в лабораторию в нативном виде (срок транспортировки не более 2 часов) в 1% п.в. или консервированные. У больных тяжелой формой ГЭК материал направляют в лабораторию нативным и в 1% п.в.

При обследовании больных с тяжелой формой холеры для посева достаточно 0,5мл. материала, а легкими формами энтерита – 2г. испражнений. В консервант материал следует помещать в количестве 3г. на 5-6мл. среды.

Способы отбора проб

1. Испражнения и рвотные массы в объеме 10-20г. стерильными ложками или стеклянными трубками с резиновой грушей переносят из судна (лотка) в стерильную банку или пробирку.

2. Для взятия материала у больных с обильным водянистым стулом можно использовать резиновый катетер №26 или №28, один конец которого вводят в прямую кишку, а другой отпускают в банку или пробирку. Жидкие испражнения набирают в сосуд свободно или при легком надавливании на брюшную полость – стенку.

3. Стерильный ректальный ватный тампон из гигроскопичной ваты вводят в прямую кишку на глубину 5-6см и собирают им содержимое со стенок кишечника. Тампон опускают во флакон или пробирку с 1% п.в., обломив часть деревянного стержня.

4. Стержневую петлю из алюминиевой проволоки перед забором материала смачивают стерильным физ. р-ром и вводят в прямую кишку на 8-10см. Взятый материал переносят во флакон или пробирку с 1% п.в.

5. Желчь берут при дуоденальном зондировании в лечебном учреждении. В отдельные пробирки собирают 2 порции. Из желчного пузыря и желчных протоков материал доставляют нативным.

6. От умерших с подозрением на холеру берут отрезки верхней, средней и нижней частей тонкого кишечника длиной около 10см. Отрезки вырезают между двойными лигатурами, наложенными на оба конца изымаемого участка кишечника.

Желчный пузырь после перевязки протока извлекают целиком. Взятые образцы органов трупа укладывают отдельно в стерильные банки. Для отбора проб используют чистую стерильную или обмытую кипятком посуду, не содержащую даже следов дезинфицирующих растворов. Стерилизацию ее проводят автоклавированием, сухим жаром или кипячением в 1% содовом растворе. Банки или пробирки с материалом закрывают непромокающими пробками и пергаментной бумагой, укладывают в специально подготовленную для транспортировки тару и перевозят на служебном транспорте с сопровождающим.

При осуществлении эпидемического надзора за холерой исследование материала от здоровых и больных ОКЗ без подозрения на холеру при отсутствии возможности 2-х сменной работы, можно проводить в условиях односменной работы, используя 1% п.в. с теллуритом К в качестве 1 или 2 среды накопления.

Используют 1% п.в. по 5-10мл без теллурита К. Продолжительность сохранения проб при температуре до 25⁰С до 24 часов в биксах, шкафу, в специально выделенной комнате, закрывающейся на замок. В случае, когда температура больше 25⁰С материал следует брать в 5-10мл 1% п.в. с теллуритом К.

НА ВЫХОДНЫЕ ДНИ: забор материала в 50мл. 1%п.в. с теллуритом К (время при 25-60 часов, 25-30-48 часов). На флаконах или пробирках с п.в. добавляется этикетка или надпись с указанием названия среды и времени приготовления ее. В стационарах среды для отбора проб рекомендуется сохранять не более 2-х суток при температуре не выше 10 градусов.

Варианты	Время взятия материала	Время доставки в лабораторию	Среда накопления
1.	6.00-10.00	До 10.00	1%п.в. 50мл
2.	10.00 до конца раб.дня	После 10.00 в течение раб.дня	1%п.в. 5-10мл
3.	По окончании раб.дня	До 10.00 следующего дня	1%п.в. 5-10мл
4.	Выходные дни лаборатории	До 10.00	1%п.в. с тел.К 50 мл

между контейнерами заполняется льдом. Второй контейнер упаковывается в ящик, на котором указывается адрес доставки.

Перевозка материала осуществляется специально выделенным транспортом с нарочным (2 человека).

До отправки в лабораторию пробы должны храниться на холоде при температуре не выше 4⁰С.

НАПРАВЛЕНИЕ ЗАПОЛНЯЕТСЯ ПО ФОРМЕ:

- наименование лаборатории, куда направляется материал

- наименование материала и вид исследования

- Ф.И.О. обследуемого

- Диагноз, подданство и название страны, откуда прибыл больной

- Дата убытия из данной страны

- Дата прибытия в РБ

- Дата заболевания

- Дата и время забора материала

- Наименование учреждения, забравшего материал

- Должность и фамилия забравшего материал

- Наименования учреждения, направившего материал

ЗАБОР МАТЕРИАЛА ПРИ ЧУМЕ

Кровь на гемокультуру

Кровь берется стерильно в количестве 10мл. из локтевой вены, посев делается у постели больного во флакон с питательной средой над пламенем спиртовки. Пробка и горлышко флакона обжигаются. В направлении – указать температуру больного, при которой забиралась кровь.

Забор пунктата бубона:

Стерильным шприцем (1мл.) бубон пунктируется от края к центру. Шприц с содержимым бубона помещается в стерильную пробирку.

Мазок из зева:

Мазок из зева берется обычным способом в стерильную пробирку ватным тампоном.

Отработанные шприцы, иглы обеззараживаются.

Пробирки с кровью с содержимым бубона, мазками из зева обрабатываются 5% раствором лизола и укладываются 5% раствором лизола и укладываются в бикс «для отправки материала». Бикс пломбируется пластилином.

Экстренное извещение

Режим питания: 4-х разовый

ДИЕТЫ 1, 4, 5 = ДИЕТА П

Общая характеристика химического состава и продуктового набора:

Физиологически полноценный рацион с механическим, химическим и термическим щажением органов пищеварения. Принцип щажения достигается исключением продуктов, обладающих сильным сокогонным действием, содержащих экстрактивные вещества, специи и грубую клетчатку.

Цель назначения:

Создание благоприятных условия для нормализации нарушенных функций органов пищеварения.

Основные показания к назначению:

Острые и обострение хронических заболеваний желудочно-кишечного тракта, печени, поджелудочной железы.

Химический состав и энергетическая ценность:

Белки 90-100г (60% - животные)

Жиры 80-90г. (30% - растительные)

Углеводы 400-450г. (70-80г.сахара)

Калорийность 2800-2900 ккал

Свободная жидкость 1,5-2,0л

Хлорида натрия 10г.

Основные способы приготовления:

Пища готовится в отварном, паровом или запеченном виде

Режим питания: 4-х разовый

ДИЕТА 0

Общая характеристика химического состава и продуктового набора:

Низкокалорийный, малообъемный рацион с минимальным содержанием белков, жиров и углеводов, с соблюдением принципов механического, химического и физического щажения.

Цель назначения:

Обеспечение организма минимальным количеством питательных веществ.

Основные показания к назначению:

Послеоперационный период в первые дни после операций.

Химический состав и энергетическая ценность:

Белки 5-10г.

Жиры 15-20г.

Углеводы 150-200г.

Калорийность 800-1200 ккал

Свободная жидкость 2,0-2,2л

Хлорида натрия 1-2г.

Основные способы приготовления: