Назальная провокационная проба

Провокационную назальную пробу проводят больным с аллергическим ринитом. В пробе могут быть использованы бытовые, эпидермальные, пыльцевые аллергены.
Обострение очагов хронической инфекции придаточных пазух носа и наличие полипозных изменений является противопоказанием к проведению пробы.
Для пробы готовят тест-контрольную жидкость и десятикратные разведения соответствующего аллергена на разводящей жидкости. Необходимы настольная лампа, лобный рефлектор, двустворчатое носовое зеркало, стерильные маркированные пипетки, марлевые салфетки, теплый физраствор, сосудосуживающие средства (нафтизин, галазолин и т.д.), антигистаминные препараты в таблетках.
Перед пробой оценивают общее состояние больного, характер носового дыхания, проводят переднюю риноскопию в первой (голова больного находится в прямом положении) и второй (голова больного запрокинута назад) позициях. При риноскопии обращают внимание на состояние нижнего и среднего носовых ходов, цвет слизистой
оболочки и степень секреции в обеих половинах носа, Одну половину носа считают контрольной, другую - опытной. Если имеется небольшое искривление носовой перегородки, то в качестве опытной берут половину носа с более широким носовым ходом.
В опытную половину носа закапывают 4 капли тест контрольной жидкости. При закапывании больной слегка отклоняет голову в бок, капли жидкости наносят на перегородку в пределах преддверья носа, крыло носа слегка прижимают к перегородке. В течение 10 минут ведут наблюдение за больным. Если его самочувствие и характер носового дыхания не изменились, а также отсутствуют изменения риноскопической картины, приступают к испытанию с аллергеном.
С интервалами в 30 минут в опытную половину носа закапывают последовательно по 4 капли каждого разведения аллергена. При этом начальную концентрацию подбирают индивидуально. После введения каждой концентрации аллергена через 10-20-30 минут оценивают характер носового дыхания, проводят переднюю риноскопию. Признаками положительной реакции считают зуд и жжение в опытной половине носа, затрудненное носовое дыхание, чихание, водянистые выделения. Риноскопически отмечают гиперемию слизистой, нарастающий отек, сужение носовых ходов, усиление секреции. Вначале все изменения выражены только со стороны опытной половины носа. Через несколько часов после этого может произойти приток эозинофилов и их появление в выделениях из носа. Пробу прекращают после появления первых признаков положительной реакции. Опытную половину носа промывают теплым физраствором, закапывают сосудосуживающий препарат (например, нафтизин), внутрь дают антигистаминный препарат. Необходим повторный осмотр больного через 24 часа. Проводят одну провокационную пробу в сутки. Интенсивность реакции, срок ее появления и концентрация аллергена отмечают в протоколе провокационной пробы.
Протокол назального провокационного теста

Примечания:
1. Отмечается хорошая корреляция результатов назальных проб с результатами кожных проб и PACT.
2. Ограниченное применение назальных проб обусловлено следующими причинами:
а) большими затратами времени до получения результатов;
б) возможностью выполнять лишь одну пробу за один раз;
в) невозможностью применения при закупорке носовых ходов.
3. При выполнении назальных провокационных проб с аллергенами плесневых грибов за сутки можно использовать только одно разведение аллергена. Наблюдение за больным должно осуществляться в течение 24 часов с обследованием слизистой оболочки в течение 30 минут после пробы, через 6 часов и через 24 часа.
3. Ингаляционная провокационная проба
Провокационный ингаляционный тест проводят у больных предастмой и атопической бронхиальной астмой. При бронхиальных (ингаляционных) провокационных пробах предполагаемый аллерген наносят на слизистую оболочку бронхов в виде аэрозолей. Пробу проводят только в условиях стационара.
Показания:
1. При невозможности выявления специфических аллергенов у больных бронхиальной астмой при помощи других методов.
2. Для объективной оценки результатов иммунотерапии при астме.
3. Для точного выявления наиболее важных аллергенов больных астмой, имеющих большое число положительных реакций на различные кожные пробы.
4. При невозможности выполнения кожных проб и отсутствии оборудования для проведения PACT (ИФА).
5. При изучении степени важности впервые обнаруженных аллергенов для развития астмы.
Противопоказания:
1. Периоды активного течения астмы.
2. Необходимость тестирования множества аллергенов.
3. Сочетание астмы с обструктивным бронхитом, туберкулезом и другими заболеваниями, нарушающими функцию дыхания.
4. Случаи, когда у больных в анамнезе есть указания на очень высокую степень сенсибилизации.
5. Малый возраст детей, исключающий возможность контакта с врачом для проведения проб.
6. Случаи, когда нет возможности держать под наблюдением больного, у которого могут развиться реакции поздней фазы.
Важно проследить, чтобы больной не принимал ряд лекарственных препаратов накануне проб (см. выше). Кроме этого, нельзя принимать симпатомиметики и бронходилататоры ксантинового ряда за 12 часов до пробы. Для выполнения теста необходимы аэрозольный ингалятор (например, типа АИ-1), пневмотахометр, спирограф или пневмотахограф, тест-контрольная жидкость, нужные концентрации испытуемого аллергена, бронхолитические препараты для ингаляционного применения антигистаминные средства. В кабинете, где проводится ингаляция аллергена, должна быть вытяжная вентиляция.
Перед пробой оценивают общее состояние больного, проводят аускультацию легких, выполняют пневмотахометрию вдоха и выдоха (ПТМвд., ПТМвыд.), на спирографе регистрируют жизненную емкость легких (ЖЕЛ), объем форсированного выдоха за первую секунду (ОФВ1) и индекс Тиффно (ОФВ1/ЖЕЛ (%) = ИТ).
На пневмотахографе регистрируют пиковую объемную скорость выхода (ПОСвыд.) и мгновенные максимальные скорости выдоха (МОС 25,50,75).
Тест начинают с двухминутной ингаляции тест контрольной жидкости. Во время ингаляции дыхание должно быть спокойным:
вдох ртом из ингалятора, выдох через нос. Через 10 минут проводят аускультацию легких, регистрируют показатели бронхиальной проходимости. При отсутствии динамики контрольных показателей приступают к пробе с аллергеном.
Ингаляцию каждой концентрации аллергена проводят в течение 2-х минут. Тщательное наблюдение за больным ведут в течение часа: через каждые 15 минут определяют ПТМвд. и ПТМвыд., через 30 и 60 минут проводят аускультацию легких, регистрируют показатели бронхиальной проходимости на спирографе или пневмотахографе. Пробу заканчивают той концентрацией аллергена, которая вызвала первые признаки положительной реакции. Концентрация неинфекционного аллергена, используемого для провокационных проб, не должна превышать l000 PNU/мл.
Признаками положительной пробы считают симптомы нарушения бронхиальной проходимости, развивающиеся после ингаляции одного из разведений аллергена. Больной ощущает затруднение выдоха, в легких выслушивают рассеянные сухие хрипы, жесткое дыхание. Отмечают динамику функциональных показателей (табл.2).
Таблица 2

Диагностическая методика	Отрицательный результат (-)	Положительный результат (+)
Жизненная емкость легких (ЖЕЛ)	Не изменилась или уменьшилась менее чем на 10%	Уменьшилась на 20% или более
Объем форсированного выдоха за 1 -ю с (ОФВ)	Не изменился или снизился менее чем на 10%	Снизился на 20% или более
Пиковая объемная скорость выдоха (ПОСвыд.)	Не изменилась или снизилась менее чем на 10%	Снизилась на 20% или более
ПТМвыд.		Снизился не менее чем на 0,5 л/с

Положительные реакции могут развиваться по типу ранних - в первые два часа или по типу поздних - через 6-8 часов (что особенно характерно для ингаляционных провокационных проб с аллергенами плесневых грибов). Возможность развития поздних реакций делает необходимым постоянное наблюдение за больным на протяжении 24 часов, что можно осуществить лишь в условиях стационара. Функциональные показатели регистрируют через 8 и 24 часа. Приступ экспираторного удушья, развившийся в результате положительной пробы, купируют бронхолитическими препаратами, введенными ингаляционно или парентерально. Через 24 часа бронхиальная проходимость восстанавливается полностью,
функциональные показатели нормализуются. Протокол провокационной пробы ведут на протяжении всего срока наблюдения за больными.
Протокол провокационного ингаляционного теста

IV. ЛАБОРАТОРНЫЕ ТЕСТЫ

ПРИСТ - прямой радиоиммуносорбентный тест
Тест для определения общего IgE в сыворотке крови. Используют технику, при которой нерастворимые иммуносорбенты с "пришитыми" антиIgЕ-антителами в течение 16 часов инкубируют либо со стандартом, либо с исследуемой сывороткой. Затем несвязанные IgE-антитела сыворотки удаляют отмыванием, после чего в течение 2-4 часов инкубируют с меченными 125J aнтиIgE-антителами. Несвязанные 125J антиIgЕ антитела снова удаляют отмыванием. По связанной радиоактивности определяют количество общего Ig E.
Радиоактивное мечение изотопом 131J, а в последнее время все чаще 125J - это многократно проверенный и надежный метод. Однако из-за того, что необходимые в этом случае реагенты опасны для здоровья и нестабильны в результате радиоактивного распада, были предложены и другие типы меток.
Успешно применяют ферменты, в частности пероксидазу и фосфотазу, которые при добавлении к реагирующим компонентам соответствующего бесцветного субстрата, называемого хромогеном, воздействуют на последний с образованием окрашенных продуктов реакции. На использовании ферментов основан, в частности, метод определения антител, а иногда и антигенов, называемый ELISA (от англ. enzyme linked immunosorbent assay) - твердофазный иммуноферментный анализ - ИФА.
Прямой метод выявления специфических Ig Е-антител:
Радиоаллергосорбентный тест (PACT)
Используют для количественной оценки антигенспецифических Ig Е-антител.
Принцип метода: содержание специфических Ig Е антител в сыворотке можно установить, используя их способность связываться с антигеном (аллергеном), находящимся на нерастворимом сорбенте-носителе. Если в используемой сыворотке содержатся соответствующие антитела, то после инкубации они взаимодействуют с аллергенами.
Несвязанные антитела сыворотки удаляют путем отмывания и оставшийся комплекс инкубируют с Ig Е-антителами, меченными 125J.
В том случае, если ранее (на 1 этапе реакции) произошло связывание реагинов с аллергенами, то молекулы 125J aнтиIgE взаимодействуют с этими реагинами. Несвязанные 125J aнтиIg E удаляют отмыванием.
Количество антигенспецифических антител определяют по связанной радиоактивности, используя соответствующие стандарты.
Преимущества PACT по сравнению с кожными пробами:
больной тратит меньше времени на исследование; на результаты не влияют принимаемые лекарственные препараты; выполнение теста не связано с риском развития у больного анафилаксии; есть возможность количественной оценки.
Недостатки PACT: не выявляет иных антител-реагинов, кроме IgE.
Примечание:
PACT хорошо коррелирует с другими пробами, особенно провокационными. По сравнению с внутрикожными пробами PACT является менее чувствительным, но более специфичным, то есть практически не дает ложноположительных результатов PACT предпочтителен у детей до 5 лет, у которых кожные пробы непрактичны, у больных экземой, которым они противопоказаны и при патологическом дермографизме, когда результаты проб ложноположительные.
Иммуноферментный анализ (ИФА)
ИФА может быть использован для количественной оценки общего Ig E в сыворотке крови. Метод основан на принципе "сандвича". К сорбированным на твердой фазе антиIgE-антителам добавляют испытуемую пробу сыворотки, инкубируют, отмывают. Затем сюда же вносят конъюгат антиIgЕ-антител с ферментом в расчете на то, что этот конъюгат может связаться со вторым свободным активным центром IgE-антител, находящихся в составе иммунных комплексов на твердой фазе. Затем стадии инкубации и отмывки, после чего вносят субстрат (хромоген), соответствующий использованному ферменту. О превращении субстрата свидетельствует изменение цвета в лунке или в пробирке с твердой фазой, причем окрашивание происходит только при наличии в составе сендвич-комплексов на твердой фазе, а соответственно и в исследуемой сыворотке крови иммуноглобулина E. Интенсивность цветной реакции оценивают спектрофотометрически относительно положительной и отрицательной контрольных проб.

Эффективность терапии и профилактики во многом определяется качеством диагностических мероприятий, направленных на выявление причин и факторов, способствующих возникновению, формированию и прогрессированию аллергических заболеваний.

Методы диагностики аллергических заболеваний включают:

1. Сбор аллергоанамнеза (анамнеза болезни и жизни пациента).

2. Объективное обследование больного.

3. Данные инструментальных методов обследования (рентген, спирометрия, эндоскопия и т. д.).

4. Данные аллергологического тестирования in vivo.

5. Данные лабораторных исследований.in vitro

6. Данные эффективности назначенной терапии.

Аллергодиагностика решает следующие задачи:

ü Дифференциальная диагностика ряда заболеваний:

o атопических заболеваний кожи,

o аллергического ринита, конъюнктивита,

o эндогенной и экзогенной бронхиальной астмы,

o аллергического бронхолегочного аспергиллеза,

o заболеваний легких с астматическим компонентом в сочетании с системными

заболеваниями,

o иммунодефицитов, миеломной болезни.

ü Диагностика пищевой аллергии.

ü Диагностика лекарственной аллергии.

ü Выявление причинного аллергена.

ü Дифференцирование аллергических состояний от симптоматически сходных заболеваний – пищевой непереносимости, др. видов гиперчувствительности, псевдоаллергических и анафилактоидных реакций.

ü Прогноз тяжести аллергического заболевания.

ü Подбор аллергенов для специфической иммунотерапии.

ü Мониторинг и контроль результатов терапии и элиминационных мероприятий.

Методы аллергодиагностики можно разделить на in vivo (инвазивные) и in vitro (неинвазивные).

К методам in vivo относятся :

1)различные виды кожных проб (прик-тесты, скарификационные, и внутрикожные пробы с разными (стандартными наборами аллергенов).

При проведении тестов на кожу наносятся или в/кожно вводятся аллергены. По реакции на них (покраснение, появление аллергической реакции в месте нанесения/введения аллергена) судят о наличии аллергии

n внутрикожные пробы - применяются для выявления сенсибилизации к аллергенам бактериального и грибкового происхождения; для определения степени чувствительности к аллергенам неинфекционной природы;

n прик-тест - применяют для диагостики реагинового типа аллергических реакций, например, пищевой, лекарственной, пыльцевой аллергии.

n Patch-тестычаще всего используют для выявления сенсибилизации на косметические средства и металлы

n В России благодаря невысокой стоимости и доступности определения, до настоящего времени наиболее распространенным является скарификационный тест.

n Аппликационные пробы— растворы стандартизованных аллергенов наносят на специальный аппликатор (пластырь).

Тесты выполняют на коже спины, предплечья.

Результаты учитывают через 20–30 мин

Реакция оценивается следующим образом:

в виде эритемы и отека - +, в виде папул - ++, с наличием волдыря- +++.

Положительный результат свидетельствует о наличии сенсибилизации организма к тому или иному аллергену. Степень выраженности реакций коррелирует с активностью патологического процесса и тяжестью течения заболевания.

Применяют для выявления аллергических реакций на пищевые, ингаляционные и др. аллергены, используются для диагностики контактной сенсибилизации на лекарственные препараты, химические аллергены, ионы металлов

Пример: Скарификационные пробы

— способ проведения кожных проб, при котором каплю испытуемого аллергена наносят на обработанную спиртом кожу внутренней стороны предплечья и повреждают эпидермис под каплей, путем нанесения двух насечек скарификатором (опыт).Одновременно аналогичным образом проводят пробы с гистамином и физ. раствором (соответственно (+) и (-) -контроли). Результат учитывают через 20–30 мин. Применяются для выявления сенсибилизации организма при ГНТ I типа. Характеризуются большей чувствительностью и, к сожалению, большей опасностью развития системных аллергических реакций.

Внутрикожные пробы

n классические— способ введения аллергена внутрь кожи.

В основе- локальная ответная реакция на введение аллергена сенсибилизированному индивидууму, которая может развиваться по немедленному и замедленному типу реакций гиперчувствительности.

Результаты реакции :

n ГНТ регистрируют через 20–30 мин

n ГЗТ — через 48–72 ч.

Применяется для:

n диагностики ГЗТ

n для выявления дефицитов Т-клеточного звена

n Внутрикожная проба ставится путем инъекции в эпидермис 0,1 мл раствора аллергена

n Типичным примером является проба Манту.

Пример :Прик-тесты— способ проведения внутрикожных проб для диагностики ГНТ.

Специальную металлическую или пластиковую иглу с ограничителем погружают в раствор аллергена и прокалывают кожу на глубину 1мм.

В качестве (+)- контроля используют 10% р-р гистамина, а (-)- растворитель.

Результат учитывают через 15–20 мин измеряя диаметр папулы в двух направлениях.

При проведении скрининга или диагностики в случае отсутствия явных указаний на определенный аллерген приходится ставить прик-тесты на несколько аллергенов.

Для упрощения и стандартизации процедуры применяют мультитестовый аппликатор — одноразовое устройство для одномоментной постановки кожных проб с аллергенами

Оценка кожных проб

n Результат кожных реакций немедленного типа учитывают через 15–20 мин.

Он может быть:

n а) отрицательным — аналогичен контрольному;

n б) сомнительным (±) — наличие только гиперемии (без волдыря);

n в)слабоположительным (+) — наличие волдыря размером 3 мм;

n г) положительным (++) — наличие четко выраженного волдыря (до 5 мм);

n д) резкоположительным (+++) — наличие волдыря величиной не более 10 мм (с гиперемией и псевдоподиями);

n е) очень резко положительным (++++) — наличие волдыря величиной свыше 10 мм (с гиперемией и псевдоподиями).

Существует ряд состояний, при которых кожные пробы не рекомендованы или противопоказаны:

· ранний возраст пациента (до 3-х лет кожные пробы запрещены),

· опасность возникновения анафилактического шока,

· рецидивирующий характер крапивницы,

· массовая пораженность кожи при тяжелом атопическом дерматите, выраженный дермографизм, ихтиоз,

· коллагенозы, васкулиты, туберкулез, тромбоцитопения,

· гематологические заболевания,

· обострение хронических аллергических заболеваний,

· психические заболевания, эпилепсия,

· риск сенсибилизации при необходимости тестировать большое количество аллергенов,

· отказ пациента от кожных проб;

неадекватны (во время лечения антигистаминными препаратами, бронхоспазмалитиками, бета-2-адренонеметиками, кортикостероидами при невозможности отменить курс лечения);

неспецифичны - ответ на консервант или стабилизаторы в препарате аллергена;

неинформативны - низкая специфичность ответа на пищевые аллергены (порядка 50 - 60%), аллергены домашней пыли, клещи; большая вероятность перекрестных реакций (особенно в сезон поллинации). Кожные тесты могут быть ложноположительными из-за присутствия в некоторых пищевых аллергенах веществ-гистаминлибераторов.

2)Аллергические провокационные пробы —

биологические пробы in vivo, позволяющие выявить у человека аллергию немедленного типа к определенному аллергену.

n Основаны на введении аллергена в орган-мишень.

n Являются более достоверными, чем кожные пробы

n используются в случае расхождения данных анамнеза и результатов кожного тестирования

2.1.Назальная проба ( для диагностики аллергического ринита, сенной лихорадки, при сомнительных результатах кожного тестирования):

n на слизистую одной из половин носа наносят каплю физ.р-ра (-)- контроль. Если через 15 мин на ней не возникает реакция, то на слизистую второй половины носа наносят каплю аллергена в концентрации, давшей сомнительный результат при кожном тестировании.

Тест считается (+)- при развитии отека слизистой, ринореи, чихания.

2.2.Ингаляционная проба проводится при (-)- результатах кожных проб для диагностики профессиональной бронхиальной астмы на такие аллергены, как формальдегид, азотистый кобальт, бихромат калия, хлористый никель.

· Проба проводится на установке с замкнутым дыхательным контуром, которая создает небольшое избыточное давление на вдохе/выдохе.

Позволяет оценить степень и уровень спазма бронхолегочного дерева (для бронхиальной астмы характерен спазм мелких бронхов и бронхиол). Вначале проводят ингаляцию дист. водой (контроль), а затем — испытуемым аллергеном.

При появлении признаков бронхоспазма (система позволяет регистрировать их до развития симптомов астмы) аллерген выводится из дыхательной смеси, а больному оказывается необходимая помощь.

2.3.Сублингвальная пробаиспользуется для диагностики пищевой и лекарственной аллергии.

n Аллерген наносится на слизистую оболочку подъязычной области. При пищевой аллергии применяются натуральные продукты в разведении 1:10, при лекарственной — 1/8–1/4 разовой дозы растворенного вещества.

Тест считается (+)- при появлении в подъязычной области гиперемии, отека, зуда, а также при учащении пульса, чиханье, кашле.

2.4.Конъюнктивальная пробаприменяется для диагностики аллергического конъюнктивита и выявления аллергенов, вызывающих его развитие.

· в конъюнктивальный мешок, отодвинув нижнее веко, закапывают 1–2 капли тест-контрольной жидкости.

При отсутствии изменений конъюнктивы через 15–20 мин переходят к исследованию с аллергеном.

Аллерген (1–2 капли) закапывают в концентрации, которая дала слабоположительную кожную пробу.

При положительной реакции проявляются слезотечение, гиперемия конъюнктивы, зуд век.

Методы диагностики in vitro

n Диагностика аллергии по анализам крови — современное направление в аллергологии.

n В отличие от кожных проб и провокационных тестов анализы крови не приводят к развитию аллергических реакций у пациента, практически не имеют противопоказаний и рекомендуются при любой форме аллергии.

Основными показаниями являются:

n ранний детский возраст;

n высокая степень сенсибилизации пациентов;

n непрерывно рецидивирующее течение заболевания без периодов ремиссии;

n невозможность отмены антигистаминных и других препаратов;

n поливалентная сенсибилизация, когда отсутствует возможность проведения тестирования in vivo сразу со всеми предполагаемыми аллергенами в ограниченные сроки обследования;

n резко измененная реактивность кожи;

n ложноположительный или ложноотрицательный результат при кожном тестировании;

n уртикарный дермографизм.

Основными преимуществами методов специфической диагностики
in vitro являются:

n безопасность для больного;

n высокая стандартность и воспроизводимость;

n возможность количественного (цифрового) учета;

n возможность автоматизации;

n возможность проведения исследования в случае, когда пациент находится от аллерголога на большом расстоянии и доставлена лишь сыворотка больного;

n малое количество крови для исследования.

К методам диагностики in vitro можно отнести:

ü Определение общего IgE.

ü Определение аллерген-специфических IgE.

ü Определение аллерген-специфических IgG (суммарно или только изотипа G4).

ü Определение гистамина, сульфолейкотриенов и других медиаторов аллергических реакций, цитокинов и ферментов воспаления.

ü Оценку уровня экспрессии трансмембранных белков-маркеров активации иммунокомпетентных клеток методом проточной цитометрии.

ü Клеточные тесты и реакции (выявление различных субпопуляций лимфоцитов, участвующих в иммунном ответе, и оценка их функциональной активности).

Интерпретация анализа

n В результате оценивается к какому классу относится тот или иной аллерген. При выявлении 3 и 4 классов и соответствующим данным клинической картины, можно говорить о данном аллергене как причиннозначимом.

n При выявлении 1 и 2 классов необходимо сопоставлять с данными клинической картины, периодом заболевания, учитывать наличие возможной перекрестной реактивации.

n При оценке результатов определения сывороточного IgE и сопоставлении с результатами кожных проб необходимо учитывать, что скорость полувыведения из сыворотки крови IgE 2-3 дня, а на тучных клетках в коже сохраняются до нескольких месяцев.

n Совпадение положительных результатов при проведении MAST и кожных проб наблюдается по интенсивности реакции и перечню аллергенов.

Хемилюминесцентный (MAST CLA).

n Аллергоскрининг IgE: количественное определение s IgE к 36 аллергенам

гриб Aspergillus, гриб Kladosporium, ольха черная, береза белая, пыльца лещины, овсяница, ежа, рожь, тимофеевка, лебеда - смесь, одуванчик, полынь - смесь, перья - смесь, лошадь, собака, кошка, таракан - смесь, домашняя пыль — смесь, клещ D.Pterony, клещ D.Farinae, яблоко, говядина, морковь, злаки - смесь (кукуруза, овес, рис), курятина, треска, яйцо цельное, орех фундук, молоко коровье, горох, свинина, картофель, соя, клубника, томат, пшеница).

n Пищевая панель IgE: количественное определение sIgE к 36 пищевым аллергенам (общий IgE, миндаль, банан, фасоль белая, говядина, морковь, капуста, смесь (белокачанная, брокколи, цветная), сельдерей, курятина, шоколад, треска, кукуруза, яйцо (белок), яйцо (желток), чеснок, молоко, грибы пищевые, лук - смесь (белый, желтый), апельсин, горох, арахис, свинина, картофель, изюм, рис, рожь, морепродукты - смесь (моллюск, краб, креветка), соя, тыква - смесь, сахар - смесь, томат, тунец, индейка, орех грецкий, пшеница, дрожжи).

n Аллергоскрининг IgE (20): количественное определение s IgE к 20 аллергенам (береза белая, амброзия (смесь), тимофеевка, полынь обыкновенная, латекс, соевые бобы, рис, треска, пшеница, арахис, белок яйца, молоко, грибAspergillus, гриб Kladospohum, гриб Alternaha, собака, кошка, таракан, клещ D.Pterony, клещ D.Farinae).