Добыча и ограничения геномной ДНК
Выделение ДНК
Начальный культур 8/0, 8/20 и 8/21 были GM17 на ночь в 3х 5 мл-Medium
одет (2.2.1). Позже прямое сравнение результатов методом ПЦР-доказательство
позволить, был взят за начало культуры по 1 мл бактериальной взвеси и
Page 51 |
2. Материал и методы
_____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
ПЦР согласно протоколу капитальному ремонту (2.7.1). Геномная ДНК была
Genomic-Tip 500/G-Kit (Qiagen) согласно прилагаемым протоколом извлечены и в 100 мкл 10
мм Tris-HCl pH 8,0 добавил. Средний размер фрагментов составляет по
Производителя 20-160 КБ. Характеристика полученной фактической длины
Фрагменты ДНК осуществлялась с помощью с помощью электрофореза геля Агарозы ДНК количественное
Фотометры, где 1 OD260 50 мкг/мл, двойной, котор сели на мель ДНК соответствует.
Ограничения с Sau3A
После добавления 3 мкл Sau3A (10 ед/мкл, MBI Fermentas) и 3 мкл буфера R 10 мкг были
геномной ДНК в 30 мкл рестрикционных подход при 37°C 2 ч выдерживают. Реакция
было! через 5 минут Нагревание до 95°C. После этого отрезка ДНК был
с помощью PCR-Purification Kit (Qiagen) и чистить с 30 мкл 10 мм Трис-HCl pH от 8,5
колонны eluting. Определение средней длине Фрагмента и
Количественное определение ДНК проводилась в свою очередь с помощью Agarosegel и фотометры.
ДНК-методы Маркировки
Монтаж Cy5-маркированных dCTPs во время ПЦР-реакции
ПЦР с парами Праймеров Авива и P936_X1out был аналог 2.7.2 и 2.7.3
выполнено (50 мм KCl, 10 мм Трис-HCl pH 9,0, 3 мм MgCl2в зависимости от 0,2 мм dATP, dGTP,
dCTP и dTTP, чем 0,4 мкм праймеров, 1 единица Taq-полимеразы, 4 мкл ДНК в 50 мкл подход). Чтобы
получить хорошую отметку в ПЦР была выявлена ДНК-фрагментов,
Соотношение маркированных немаркированных для fluoro ссылка Cy5-dCTP (Amersham
Pharmacia Bioscience) в соотношении 1:40, 1:20 и 1:4 колеблется.
Коэффициент немаркированных /
Выделенный Cy5-dCTPs
Конц. непомеченных
DCTPs
Конц. выделенных
DCTPs
Конц. dCTPs в
Подход
1:40
0,195 мм
0,005 мм
0,2 мм
1:20
0,19 мм
0,01 мм
0,2 мм
1:4
0,15 мм
0,05 мм
0,2 мм
Random Primed Labelling ДНК с Cy5-dCTP
Маркировка 2 мкг отрезанный геномной ДНК проводили с использованием ДНК BioPrime
Labelling System (Life Technologies) в модификации протокола Stanford University
Page 52 |
2. Материал и методы
_____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
(http://cmgm.stanford.edu/pbrown/protocols/4_genomic.htm). К ДНК в 20 мкл 2,5 х были
Random Primer решение и H2O до общего объема 40 мкл добавляли. В
Реакция подход инкубируют 5 мин при 95°C и затем при охлаждении на льду
система смягчения грунтовки позволяет. После добавления 5 мкл dNTP-Mix (1 мм dCTP, 2
мм dATP, 2 мм dGTP, 2 мм dTTP в 10 мм Трис-HCl рН 7,5, 1 мм ЭДТА), 3 мкл 1 мм
Fluoro ссылка Cy5-dCTP (Amersham Pharmacia Bioscience) и 2 мкл Klenow фрагмент
(40 ед/мкл) смешивали подход и 3 ч при 37°с. инкубируют. Через 5 мкл 0,5 М ЭДТА рН
8,0 реакция была остановлена.
Nick Translation System
Установка Cy5-dCTP с небольшими изменениями производилась через ник Translation
System (Promega) в соответствии с протоколом для установки радиоактивно-выделенных нуклеотидов. 1 мкг
отрезанные геномной ДНК был с 5 мкл 10х Nick Translation Буфера (500 мм Трис-
HCl, рН 7,2, 100 мм MgSO4, 1 мм DTT), чем 3,3 мкл dATP, dGTP и dTTP (концентрация
чем 300 мкм), 1 мкл 1 мм fluoro ссылка Cy5-dCTP (Amersham Pharmacia Bioscience), 5 мкл
Nick Translation Enzyme Mix (1.000 ед/мл ДНК полимераза I, 3 ед/мл DNase I, 50%
Глицерин, 50 мм Трис-HCl рН 7,2, 10 мм MgSO4, 0,1 мм DTT, 0,5 мг/мл BSA) смешанные
и до реакционном объеме 50 мкл с Ч2O пополняется. Для
Метки реакцию инкубируют подход 2 ч при 15°C. Реакция была тогда
при добавлении 5 мкл 0,25 М ЭДТА рН 8,0 остановился.
Очистка выделенной ДНК
Отделение dNTPs и выделения ферментов осуществлялось с Microcon YM 30
Фильтры (Millipore) как в корпоративном журнале описано. Отрезанная и начинает использовать
геномная ДНК была включена в конечный объем 12 мкл TE pH 7,4 и
с помощью фотометра сканирования самонадеянно. Расчет эффективности проводилась Маркировка
по следующей формуле:
c Нуклеотиды
E 260 нм • ε Cy5 • d
Эффективности маркировки = =
c Cy5
E 649 нм • ε Нуклеотиды • d
с ε Cy5 =250.000 M-1см-1 и ε Нуклеотиды = 12.025 М-1см-1.
До гибридизации на ДНК-Массив ДНК хранили при -20°C.
Page 53 |
2. Материал и методы
_____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
Пред-)гибридизация микро массивы
Состав гибридизации различных решений в таб. 18 показано. Это
Рецепт для приготовления раствора 1 был любезно миссис дипл. Biol. (t. o.) Denja Drutschmann
обеспечено. Растворы 2 и 3 основаны на микро массива
Гибридизация журнала Стэнфордского университета или из in situгибридизации
(см. 2.6.3) известной процедуре. При этом каждые 2 разные были Stringenzen
отлажена. Которые Prähybridisierung ДНК-микро-массивах произошло в 50 мл каждого
Гибридизация решение без учета Целевой ДНК за 1 ч при 46°C.
Hybridisie-
Rungslsg. 1
Hybridisierungslsg. 2
Hybridisierungslsg. 3
Формамид
20%
20%
0%
20%
0%
SSC
-
4x
4x
-
-
EDTA pH 7,0
1 мм
-
-
-
-
NaCl
600 мм
-
-
900 мм
900 мм
Трис рН 8,0
10mM
-
-
20 мм
20 мм
SDS
-
0,02%
0,02%
0,01%
0,01%
Denhardt's Реагент
1x
1x
1x
-
-
Fish-ДНК
500 мкг/мл
500 мкг/мл
500 мкг/мл
-
-
Tab. 18. Гибридизация решения для ДНК-чип-гибридизации.
Для гибридизации необходимые покровные стекла были очищены с моющим средством и
тщательно смывают водой. После Prähybridisierung была жидкость от
ДНК-Массив не капала, это но сушат. Для подготовки
Гибридизация реакции были 170 мкл гибридизации раствора с 30 мкл выделенных ДНК
смешать и на 10 мин денатурации в ПЦР-Cycler (Ландграф) при 95°C нагревается. Как
Положительный контроль был 1 мкл одного Cy3 меченных, к EUB338-зонд отворотом
комплементарных олиго-нуклеотида признал. Сразу после денатурации ДНК-
Массив гибридизации с решением überschichtet, пузырьков воздуха с подготовленными
Палубы покрыты стеклами и на ночь при 46°C во влажной камере equilibrierten
инкубируют.
После гибридизации ДНК-микро массив был погружен до тех пор, пока в промывной раствор 1
себя покровное стекло было заменено. Затем была утка по-разному string, 20-
минутный стиральные действия, не удаляет твердый ДНК с поверхности (моющего раствора 1:
2x SSC, 0,2% SDS; моющий раствор 2: 1x SSC, 0,1% SDS; промывочный раствор 3: 0,5 x SSC, 0,05%
Page 54 |
2. Материал и методы
_____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
SDS). Поскольку SDS-остатки могут увеличить Фон, был с микро массива в последнюю очередь
SDS-свободный моющего раствора 3 промыть и либо в N2Питания или через 5 минут
Центрифугирование в Greiner-пробирки (Eppendorf центрифуга с Swing-Out-ротор 500-1.000
мин) сушат. Сигналов детектирование осуществлялось по флуоресценции-сканер (аксон, компания Biozym)
используя GenePix 3.0 программного обеспечения.
Page 55 |
3. Результаты
_____________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________________
Результаты
3.1. Демографического анализа с флуоресцентнойin situгибридизации