Тема 13.3. ВОЗБУДИТЕЛИ ПИЩЕВЫХ

ТОКСИКОИНФЕКЦИЙ, ИНТОКСИКАЦИЙ, ХОЛЕРЫ

И ДРУГИХ БАКТЕРИАЛЬНЫХ КИШЕЧНЫХ ИНФЕКЦИЙ

План

Программа

Биологические свойства возбудителей холеры, пищевых токсикоинфекций и интоксикаций. Их патогенность, экология, особенности инфекции и эпидемио­логия вызываемых заболеваний.

Лабораторная диагностика.

Диагностические, профилактические и лечебные пре­параты.

Демонстрация

Мазки из чистых культур возбудителей пищевых ин­токсикаций кишечных инфекций: Staphylococcus aureus, Clostridium perfringens, Vibrio cholerae. Окраска по методу Грама.

Диагностические и лечебно-профилактические пре­параты.

Задание студентам

Микроскопировать и зарисовать мазки из чистых культур возбудителей кишечных инфекций.

Бактериологическая диагностика холеры.

Указать материал для исследования.

Идентификация чистой культуры вибрионов, вы­деленных от больного:

изучить морфологические и тинкториальные свойства: микроскопировать мазок из чистой
культуры, выделенной от больного;

изучить антигенные свойства: отметить резуль­таты развернутой реакции агглютинации с диа­гностической 01-сывороткой;

изучить биохимические свойства: отметить ре­зультат гексаминового теста;

определить чувствительность выделенной куль­туры к диагностическим бактериофагам;

отметить способность к росту на среде с полимиксином;

дать заключение.

3. Диагностика ботулизма:

указать материал для исследования;

проанализировать результаты РИГА для обнаруже­ния ботулотоксина в сыворотке крови больного
(реакция Бойдена). Дать заключение.

4. Ознакомиться с диагностическими и лечебно-профи­лактическими препаратами.

Методические указания

• МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА ПИЩЕВЫХ ТОКСИКОИНФЕКЦИЙ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ПРИРОДЫ

• Микробиологическая диагностика пищевых токсикоинфек-иий, вызванных Escherichia spp., Salmonella spp., Proteus spp,

МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: фекалии, рвотные мас­сы, промывные воды желудка больного, остатки пищевых про­дуктов — возможные источники и факторы передачи инфек­ции.

МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Бактериологическое исследование. Производят путем посева

материала на дифференциально-диагностические и элективные среды (Эндо, висмут-сульфит агар и др.) для выделения чистой культуры сальмонелл и эшерихии, а также в конденсационную воду в пробирке со скошенным питательным агаром для вы­явления бактерий рода Proteus. После инкубации посевов при 37 °С в течение 20—24 ч отмечают цвет колоний на чашках с дифференциальной средой и наличие "ползучего" роста, ха­рактерного для Proteus spp., в пробирке со скошенным пита­тельным агаром. Подозрительные колонии пересевают на ско­шенный питательный агар для получения чистых культур и одновременно ставят с ними ориентировочную реакцию агг­лютинации на стекле, используя смеси диагностических сыво­роток. На следующий день с чистой культурой ставят развер­нутую реакцию агглютинации с соответствующей монорецеп-торной сывороткой и делают посев на среды "пестрого" ряда. При выделении одного и того же серовара сальмонелл или эшерихии из организма больных людей и пищевого продукта делают окончательное заключение об этиологии пищевой ток-сикоинфекции — источнике заболевания. При наличии "пол­зучего" роста на скошенном питательном агаре из конденса­ционной воды петлей берут материал для приготовления пре­парата "висячая" капля с целью установления подвижности и для мазка, который окрашивают по методу Грама и микроско-пируют. Затем выделяют чистую культуру, определяют биохи­мические и другие признаки и устанавливают вид: P.vulgaris, P.mirabilis, P.morganii и P.rettgeri.

Оценка роли условно-патогенных микроорганизмов в этио­логии пищевых токсикоинфекций должна быть строго аргу­ментирована: а) бактериологическим, серологическим, эпиде­миологическим и клиническим исключением сальмонеллезов, дизентерии, холеры; б) выделением идентичных штаммов ус­ловно-патогенных бактерий из рвотных масс, промывных вод желудка, испражнений, продуктов.

• МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА ПИЩЕВЫХ ИНТОКСИКАЦИЙ БАКТЕРИАЛЬНОЙ ПРИРОДЫ

• Микробиологическая диагностика стафилококковых пище­вых интоксикаций

МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: рвотные массы, про­мывные воды желудка, подозрительные пищевые продукты.

МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Экспресс-методы диагностики: иммунохимические, биохими­ческие и молекулярно-биологические исследования. Иммуно­химические исследования. Диагностика основана на об­наружении энтеротоксина в исследуемом материале. Энтеро-токсин Staphylococcm spp. экстрагируют изотоническим раствором хлорида натрия, затем определяют его присутствие и се­рологическую специфичность реакцией преципитации в геле с иммунными антитоксическими сыворотками А, В, С. Техника постановки реакции описана выше (см. рис. 10.1.6). Исполь­зуют также латекс-агглютинацию, ИФА, РИА и др.

Бактериологическое исследование. С целью выделения чис­той культуры стафилококка исследуемый материал, который может содержать жизнеспособные бактерии, засевают в чашки с ЖСА. Полученные по схеме (см. тему 12.1) чистые культуры проверяют на способность продуцировать энтеротоксины. Для эпидемиологического анализа массовых стафилококковых ин­токсикаций проводят фаготипирование выделенных культур с помощью набора стафилококковых фагов.

Биопроба. Для обнаружения энтеротоксина можно исполь­зовать биопробу — скормить изучаемый материал котятам-со­сункам, у которых стафилококковый энтеротоксин вызывает рвоту и понос через 30—60 мин после скармливания.

• Микробиологическая диагностика пищевых интоксикаций,
вызванных C.perfringens типа А

МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: подозрительные пи­щевые продукты (мясные, рыбные и др.), испражнения, рвот­ные массы, промывные воды желудка.

МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Бактериологическое исследование. Поскольку энтеротоксин C.perfringens типа А выделяется в процессе спорообразования в кишечнике больного и быстро разрушается, обнаружить его в продуктах или материале от больного практически не удается. Основным методом диагностики является бактериологический. Выделение чистой культуры производят стандартным методом (см. тему 12.2). Диагностическое значение имеет обнаружение большого количества бактерий в материале от больного и по­дозрительном продукте.

• Микробиологическая диагностика ботулизма

МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: сыворотка крови, мо­ча, испражнения, промывные воды желудка, остатки пищи или подозреваемые продукты (колбасы, мясные, рыбные, фрукто­вые, овощные консервы и др.).

МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Экспресс-методы диагностики: иммунохимические, биохими­ческие и молекулярно-биологические исследования. Иммуно­химические исследования. Диагностика основана на об­наружении ботулотоксина в исследуемом материале. С этой целью ставят реакцию Бойдена — РИГА с эритроцитами, на­груженными моновалентными антитоксическими противобо-тулиническими сыворотками типов А, В, Е. В качестве кон­троля используют нормальную сыворотку крови. Для выявле­ния ботулотоксина могут быть использованы также ИФА и другие чувствительные серологические реакции.

Биопроба. Для обнаружения ботулотоксина в пищевых про­дуктах и определения токсигенности C.botulinum можно про­вести реакцию нейтрализации токсина на белых мышах. Для определения серотипа токсина реакцию ставят с моновалент­ными сыворотками типов А, В, Е. При нейтрализации токсина гемолитической антитоксической сывороткой мыши остаются живыми.

• Микробиологическая диагностика пищевых интоксикаций, вызванных бактериями рода Bacillus

МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: рвотные массы, про­мывные воды желудка, фекалии, подозрительные пищевые продукты.

МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Бактериологическое исследование. Материал засевают на кровяной агар или селективные среды с лецитином и поли-миксином. При исследовании материала, содержащего посто­роннюю микрофлору (фекалии), образцы предварительно об­рабатывают нагреванием при 63 °С в течение 15 мин или 50 % этиловым спиртом (45—60 мин) для уничтожения вегетативных форм бактерий. Споры возбудителя при этом сохраняются. Идентификацию выделенной чистой культуры производят по морфологии, наличию и расположению спор, тинкториальным свойствам и биохимическим признакам. Для эпидемиологичес­кого анализа осуществляется серотипирование по жгутиковому антигену (существует более 40 серотипов).

Экспресс-методы диагностики: иммунохимические, биохими­ческие и молекулярно-биологические исследования. Иммуно­химические исследования. Токсины Bacillus cereus могут быть обнаружены во всех вышеназванных видах материала, включая фекалии, с помощью серологических реакций (ИФА, РИА, иммунопреципитации и др.).

Биохимические и молекулярно-биологические исследования. Исследуемый материал, полученный из очага инфекции, используют для обнаружения ДНК возбудителя с помощью ПЦР. В случае обнаружения соответствующих моле­кул можно поставить предварительный диагноз.

• МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА ХОЛЕРЫ

МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: испражнения боль­ного, рвотные массы, вода, пищевые продукты; при постмор-тальной диагностике: отрезки тонкой кишки и желчный пу­зырь с частью печени. При необходимости хранения материал помещают в транспортную среду (буферный солевой раствор с глицерином). Для длительного сохранения рекомендуется по­лоску фильтровальной бумаги, смоченную в жидких испраж­нениях, поместить в герметически закрытый пластиковый кон­тейнер — для предохранения от высыхания. Таким образом возбудитель сохраняется в материале до 5 нед.

МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Бактериоскопическое исследование. Из исследуемого мате­риала готовят мазки, окрашивают их по методу Грама и вод­ным фуксином. Кроме того, из нативного материала готовят препарат "висячая" капля, в котором определяют наличие по­движных вибрионов при темнопольной или фазово-контраст-ной микроскопии. Обнаружение в мазках большого количества грамотрицательных, слегка изогнутых палочек (длиной от 1,5 до 3 мкм) и активно-подвижных вибрионов в препарате "ви­сячая" капля позволяет дать первый предварительный положи­тельный ответ (рис. 13.3.1; на вклейке).

Бактериологическое исследование. Материал засевают в раз­личные жидкие и плотные элективные среды, в частности во флаконы со щелочной пептонной водой (1 % с теллуритом) и на чашки со щелочным питательным агаром. Посевы на пеп­тонной воде инкубируют при 37 °С в течение 5—6 ч, на чаш­ках — 10—12 ч. Из голубоватой пленки, образующейся на пеп­тонной воде, или из ее поверхностного слоя делают мазки и препараты "раздавленная" и "висячая" капля. Этот же мате­риал используют для постановки реакции агглютинации на стекле со специфической противохолерной 01-сывороткой. Часть пептонной воды переносят в другую пробирку для по­становки нитрозоиндоловой пробы. Для этого добавляют туда же несколько капель серной кислоты. В положительном случае появляется розовое окрашивание вследствие образования нитрозоиндола под влиянием холерного вибриона. Независимо от результатов исследования делают пересев на вторую пептон-ную воду. Наличие грамотрицательных вибрионов, агглютини­рующихся 01-сывороткой, позволяет дать второй предвари­тельный ответ. Независимо от полученных результатов продол­жают исследование, как показано на схеме 13.3.1.

Выделение чистой культуры и ее идентификацию проводят по 5—6 однотипным колониям, выросшим на щелочном агаре. Для ускорения хода анализа ставят развернутую реакцию аг­глютинации с бактериальной суспензией, приготовленной из колоний. Для этого агглютинирующую 01-сыворотку разводят в пробирках до титра пептонной водой (в объеме 0,5 мл). Затем в каждую пробирку вносят 1—2 капли суспензии бактерий. Результат реакции агглютинации учитывают после 3—4-часо­вой инкубации при 37 °С.

Идентификацию культуры проводят на основании опреде-

Тест V.choterae V.cholerae Неагглюти-asiatici el-tor нирующиеся вибрионы Агглютинация О-сывороткой + + — Агглютинация типовыми сы- + + — воротками Огава и Инаба Лизис фагами: холерный фаг С (фаг IV) + + фаг Эль-Тор II — + + Агглютинация куриных эрит- — + + роцитов Гемолиз эритроцитов барана — + + Рост на агаре с 50 ЕД поли- — + + миксина Гексаминовый тест — + + Реакция Фогеса— Проскауэра — + + (образование ацетил метил -карбинола)

кой, типовыми сыворотками Огава и Инаба или типовыми холерными фагами. Готовят из них препараты "раздавленная" капля, которые исследуют с помощью темнопольной и фазо-во-контрастной микроскопии. В положительном случае через 3—5 мин движение вибрионов прекращается.

Иммунохимические исследования. Применяют ме­тод прямой ИФ. Мазки из исследуемого материала обрабаты­вают флюоресцирующей противохолерной сывороткой и ис­следуют в люминесцентном микроскопе. Положительным ре­зультатом считается обнаружение в препарате даже единичных вибрионов с ярким желто-зеленым свечением в виде блестя­щего ободка по периферии клетки. Положительный результат можно получить через 1—2 ч после начала исследования при концентрации вибрионов не менее 10⁶ клеток в 1 мл, поэтому рекомендуется предварительное подращивание материала на питательных средах.

Биохимические и молекулярно-биологические исследования. Исследуемый материал, полученный из очага инфекции, используют для обнаружения ДНК возбудителя с помощью ПЦР. В случае обнаружения соответствующих моле­кул можно поставить предварительный диагноз.

Серодиагностика. Выявление антител к возбудителю являет­ся вспомогательным и применяется для ретроспективной диа­гностики холеры, выявления вибрионосителей и оценки напря­женности постинфекционного и поствакцинального иммунитета. Для этого обычно ставят реакцию агглютинации или РИГА, диагностический титр антител в этих реакциях 1:80—1:320, а также определяют вибриоцидные антитела в реакции лизиса.

• Диагностика носителъства

Во время вспышки холеры проводят массовое обследование на носительство V.cholerae.

МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: ректальные мазки (фекалии, взятые тампоном из прямой кишки).

МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Бактериологическое исследование. Посев материала от 10 обследуемых на обогатительную среду с 01-агглютинирующей диагностической сывороткой. В положительных случаях через 3—4 ч начинается выпадение хлопьев в результате агглютина­ции размножившихся вибрионов. При обнаружении в осадке грамотрицательных подвижных вибрионов каждый из 10 паци­ентов обследуется индивидуально.

• МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА КИШЕЧНЫХ ИНФЕКЦИЙ, ВЫЗВАННЫХ БАКТЕРИЯМИ РОДА VIBRIO

Возбудители: V.cholerae не О1 (серовары О4, Об и др.), V.mimicm, V.parahaemolyticus, V.fluvialis и др.

МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: фекалии, рвотные массы, ректальные мазки.

МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Бактериоскопическое исследование. Изучение нативных маз­ков ("висячая" или "раздавленная" капля) методом темнополь-ной или фазово-контрастной микроскопии и фиксированных препаратов, окрашенных по методу Грама. Предварительный диагноз ставится на основании обнаружения подвижных грам-отрицательных вибрионов при исключении холеры с помощью экспресс-методов (отрицательная реакция иммобилизации и иммунофлюоресценции с 01-специфической сывороткой). Метод имеет ориентировочное значение, поскольку не позво­ляет дифференцировать между собой различных представите­лей семейства Vibrionaceae.

Бактериологическое исследование. Посев материала на ос­новные (кровяной агар), а также на элективные и дифферен­циально-диагностические среды для вибрионов. Возбудители дифференцируют по культуральным, антигенным и биохими­ческим признакам.

Экспресс-методы диагностики: иммунохимические, биохими­ческие и молекулярно-биологические исследования. Биохими­ческие и молекулярно-биологические исследования. Исследуемый материал, полученный из очага инфекции, ис­пользуют для обнаружения ДНК возбудителя с помощью ПЦР. В случае обнаружения соответствующих молекул можно поста­вить предварительный диагноз.

• МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА КИШЕЧНЫХ ИНФЕКЦИЙ, ВЫЗВАННЫХ БАКТЕРИЯМИ РОДА AERO-MONAS

МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: фекалии, рвотные массы, ректальные мазки.

МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Бактериоскопическое исследование. См. раздел "Микробио­логическая диагностика кишечных инфекций, вызванных бак­териями рода Vibrio".

Бактериологическое исследование. Посев материала на ще­лочную пептонную воду и селективную среду — агар с добав­лением антибиотиков (ампициллина, новобиоцина и др.). При росте на кровяных средах характерен бета-гемолиз. Идентифи­кацию чистой культуры производят на основании культураль-ных, биохимических признаков, серотипирования, фаготипи-рования, используют также молекулярно-биологические мето­ды идентификации (риботипирование и др.).

Экспресс-методы диагностики: иммунохимические, биохимические и молекулярно-биологические исследования. Биохими­ческие и молекулярно-биологические исследования. Исследуемый материал, полученный из очага инфекции, ис­пользуют для обнаружения ДНК возбудителя с помощью ПЦР. В случае обнаружения соответствующих молекул можно поста­вить предварительный диагноз.

• МИКРОБИОЛОГИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА КИШЕЧНЫХ ИНФЕКЦИЙ, ВЫЗВАННЫХ БАКТЕРИЯМИ РОДА PLESIOMONAS

МАТЕРИАЛ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ: фекалии, рвотные массы, ректальные мазки.

МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ:

Бактериоскопическое исследование. См. раздел "Микробио­логическая диагностика кишечных инфекций, вызванных бак­териями рода Vibrio".

Бактериологическое исследование. Посев материала на ще­лочную пептонную воду, кровяной агар (гемолиз нехарактерен) и селективную среду — агар с добавлением инозитола, желчных кислот и бриллиантового зеленого. Идентификацию чистой культуры производят на основании культуральных, биохими­ческих признаков, серотипирования по О- и Н-антигенам (не­обходимо помнить, что P.shigelloides имеет перекрестные анти­гены с S.sonnei и может давать положительную РА с соответ­ствующими диагностическими сыворотками). Используют также молекулярно-биологические методы идентификации (риботипирование и др.).

Экспресс-методы диагностики: иммунохимические, биохими­ческие и молекулярно-биологические исследования. Биохими­ческие и молекулярно-биологические исследования. Исследуемый материал, полученный из очага инфекции, ис­пользуют для обнаружения ДНК возбудителя с помощью ПЦР. В случае обнаружения соответствующих молекул можно поста­вить предварительный диагноз.

• ДИАГНОСТИЧЕСКИЕ, ПРОФИЛАКТИЧЕСКИЕ И ЛЕЧЕБ­НЫЕ ПРЕПАРАТЫ

Стафилококковые бактериофаги (международный набор). Применяют для фаготипирования стафилококков с целью эпи­демиологического анализа пищевой интоксикации.

Противоботулинические сыворотки. Получены из крови ло­шадей, гипериммунизированных ботулиническими анатокси­нами. Очищены и концентрированы методом диаферм-3. Для лечебно-профилактических целей готовят Противоботу­линические сыворотки четырех типов: А, В, Е, F. Монова­лентные сыворотки перечисленных типов используют в диагностических целях для определения серотипа токсина в ис­следуемом материале.

Ботулинический трианатоксин адсорбированный очищенный.

Экзотоксины C.botulinum (серотипы А, В и Е) обезвреживают формалином при нагревании, а затем очищают от балластных веществ, концентрируют и адсорбируют на гидрате оксида алюминия. Применяют для проведения плановой активной иммунизации против ботулизма юношей допризывного возрас­та (16 лет).

Противохолерная агглютинирующая О-сыворотка, типовые сыворотки Огава и Инаба. Получены из крови кроликов, им­мунизированных холерными вибрионами. Применяют для се­рологической идентификации и типирования холерных вибри­онов в реакции агглютинации.

Холерные фаги. Типовые холерные фаги применяют для идентификации и типирования холерных вибрионов. Полива­лентный холерный бактериофаг используют для лечебно-про­филактических целей.

Холерная вакцина. Взвесь убитых холерных вибрионов при­меняют для активной иммунизации против холеры. Готовится из чистых культур V.cholerae O1 биоваров El-tor и asiatici cepo-типов Инаба и Огава.

Холероген-анатоксин. Обезвреженный холерный токсин. При­меняют для специфической профилактики холеры (создание активного специфического антитоксического иммунитета).

Антибиотики. Могут быть использованы все препараты, дей­ствующие на соответствующие бактерии. Вместе с тем надо учитывать, что среди возбудителей достаточно широко распро­странены устойчивые варианты. Для большинства грамотрица-тельных возбудителей кишечных инфекций широко использу­ют тетрациклины, ампициллин, цефалоспорины 2—4-го поко­лений, хлорамфеникол, фторхинолоны.

Глава 14