Различают два основных типа колоний

· Гладкие – S – тип. Характеризуется круглой и выпуклой формой, гладкой поверхностью, влажной консистенцией.

· Шероховатые – R – тип. Характеризуется шероховатой поверхностью, неправильными краями, сухой консистенцией. Образуются из гладких S-форм в результате мутации.

Существует еще слизистый М –тип, характеризующийся тягучей слизистой консистенцией. Образуется в процессе диссоциации бактериальных культур.

Часть колонии берут для приготовления мазков, которые окрашивают и микроскопируют.

3. Третий этап исследований –изучение биохимических , антигенных свойств выделенных микроорганизмов.

Биохимическая активность микроорганизмов обусловлена их ферментативной деятельностью.

Ферменты являются биологическими катализаторами, определяющими метаболические процессы, протекающие в микробных клетках.

Разные виды микроорганизмов отличаются по набору ферментов, которые они способны синтезировать.

виды колоний ИНСТРУКЦИИ ПО ПРАВИЛАМ СБОРА БИОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА ДЛЯ МИКРОБИОЛОГИЧЕСКИХ ИССЛЕДОВАНИЙ 1. Проведение исследования и сбора материала до начала лечения антибиотиками, антисептиками, противогрибковыми препаратами. 2. При взятии пробы следует строго соблюдать правила асептики, во избежание ее случайной посторонней контаминации. 3. Для взятия проб следует использовать стерильные инструменты, а для их транспортировки стерильные пробирки или контейнеры 4. Транспортировка материала должна осуществляться в максимально короткие сроки: как правило, не более 1,5 — 2 часов. 5. Всегда следует стремиться использовать транспортные системы со средой (консерванты), что позволяет пролонгировать время транспортировки до 24 часов и более или осуществлять посев непосредственно у постели больного (кровь, ликвор и др.); 6. Все образцы должны иметь четкую маркировку, обеспечивающую их безошибочную идентификацию. К каждому образцу прикладывается направление. В направлении на исследование должны быть отображены следующие данные: · дата и время назначения исследования; · дата и время взятия биологического материала; · Ф.И.О. пациента; · отделение, номер амбулаторной карты/истории болезни, номер палаты; · возраст, пол; · диагноз; · Ф.И.О. лечащего врача; · перечень необходимых исследований; · подпись специалиста, проводившего забор клинического материала. 7. К работе по взятию и транспортировке биологического материала допускается медицинский персонал, прошедший специальный инструктаж по технике работы и мерам безопасности. 8. При взятии биологического материала должны использоваться средства защиты: медицинские халаты, шапочки, сменная обувь, резиновые (латексные, виниловые) перчатки, а при необходимости — дополнительно марлевые маски (респираторы), очки, клеенчатые фартуки. 9. Работать с исследуемым материалом следует в резиновых (латексных, виниловых) перчатках, все повреждения кожи на руках должны быть закрыты лейкопластырем или напальчником. Следует избегать уколов и порезов. 10. В случае загрязнения кожных покровов кровью или другими биологическими жидкостями следует немедленно обработать их в течение 2 мин. тампоном, обильно смоченным 70% спиртом, вымыть под проточной водой с мылом и вытереть индивидуальным тампоном. При загрязнении перчаток кровью их протирают тампоном, смоченным 3% раствором хлорамина, 6% раствором перекиси водорода. 11. При подозрении на попадание крови на слизистые оболочки, их немедленно обрабатывают струей воды, 1% раствором протаргола; рот и горло прополаскивают 70% спиртом или 1% раствором борной кислоты или 0,05% раствором перманганата калия. 12.Для транспортировки образцов следует использовать преимущественно пластиковую одноразовую тару, герметично закрытую пластмассовыми, резиновыми пробками или завинчивающимися крышками. Запрещается использовать стеклянную посуду со сколами, трещинами и т.п. При транспортировке сосудов, закрытых целлюлозными (ватными) пробками, следует исключить их увлажнение. 13.Транспортировка биоматериала осуществляется в специальных закрытых переносках (укладках), желательно - термостатированных, выдерживающих дезинфекцию. 14.Сопроводительная документация помещается в предназначенный для нее карман переноски (укладки), а в случае его отсутствия — кладется в переноску в отдельном полиэтиленовом пакете. 15. При хранении биологического материала в холодильнике каждый образец упаковывается в отдельный полиэтиленовый пакет. Для этой цели выделяется отдельный холодильник, хранение в котором пищевых продуктов и лекарственных препаратов не допустимо. 16. Правильно хранить выданные транспортные среды (в холодильнике) и согревание до комнатной температуры перед использованием (примерно 30 минут). 17. Правильно выбирать транспортную среду для каждого вида исследования.. 18. Соблюдать сроки и режим хранения проб, полученных для исследований. ПРАВИЛА СБОРА КАЛА ПРИ ИССЛЕДОВАНИИ МИКРОФЛОРЫ КИШЕЧНИКА (ДИСБАКТЕРИОЗ) 1. Все обследуемые пациенты за 1-3 дня до взятия пробы должны находиться на диете, исключающей приём продуктов, усиливающих процессы брожения в кишечнике и молочно-кислые продукты, также алкоголь, антибиотики и бактерийные препараты (содержащие бифидобактерии, лактобактерии, кишечные палочки и т.д.). 2. Материалом служит кал после естественной дефекации, который собирают в чистый одноразовый контейнер с завинчивающейся крышкой и ложечкой. 3. Не рекомендуется собирать кал из унитаза. 4. Собирают кал на чистую поверхность, в качестве которой может быть использован чистый новый лист (пакет) из полиэтилена или бумаги (этот способ является предпочтительным). 5. При использовании судна, его предварительно хорошо промывают с мылом и губкой, ополаскивают многократно водопроводной водой, а потом обдают кипятком и остужают. 6. Кал берут преимущественно из средней порции специальной ложечкой, вмонтированной в крышку стерильного контейнера, в количестве не более 1/3 от объема контейнера. Не наполняйте контейнер доверху. Тщательно закройте крышку. 7. Для правильной оценки результатов рекомендуется проведение 2-3-кратных исследований с интервалом 1-2 дня. ИССЛЕДОВАНИЕ КАЛА НА ПАТОГЕННУЮ И УСЛОВНО-ПАТОГЕННУЮ МИКРОФЛОРУ 1. Взятие проб кала должно осуществляться на ранних этапах болезни, пока патогенные микробы содержатся в материале в большом количестве. 2. Для сбора кала пациенту выдается контейнер с крышкой и ложечкой. 3. Если пациент собирает кал дома, ему нужно выдать инструкцию (см. выше), где изложены правила сбора и предупредить о том, что материал должен быть доставлен в лабораторию, как можно быстрее. 4. Если кал собирается в условиях медицинского центра и доставка не может быть осуществлена в кратчайший срок, для сохранности материала используют транспортную систему со средой CaryBlair. Тампон погружают в фекалии поочередно в нескольких местах, после чего он погружается в пробирку с транспортной средой. Нет необходимости переносить кусочки кала. 5. Если кал собираются исследовать только на золотистый стафилококк или грибы, то в качестве транспортной среды может быть использована среда Эймс с углем. 6. При исследовании кала на ротавирус и Clostridiumdifficile жидкий кал доставляется только в контейнере, а не на тампоне. 7. Кал в стерильном контейнере с момента его получения до переноса в транспортную среду может храниться при комнатной температуре не более 2-х часов. ИССЛЕДОВАНИЕ РЕКТАЛЬНОГО СОДЕРЖИМОГО 1. Перед взятием мазка проводится тщательный туалет с мылом и водой области вокруг анального отверстия для снижения контаминации пробы. 2. Осторожно вводят тампон на 2,5 см вглубь анального сфинктера и аккуратно вращают его в течение 10 секунд для получения материала с анальных складок, после чего помещают в пробирку с транспортной средой CaryBlair. 3. Если цель исследования посев на гонорею, мазок берут аналогичным образом в транспортную среду Эймс с углем. ЖЕЛЧЬ 1. Желчь собирают при зондировании в процедурном кабинете отдельно по порциям А, В и С в три стерильные пробирки с плотно закрывающимися крышками. 2. Полученные порции желчи желательно доставить в лабораторию не позднее 1-2 ч от момента взятия. 3. При невозможности доставить материал в указанный срок, допускается хранение. ИССЛЕДОВАНИЕ ПРОМЫВНЫХ ВОД, ЛАВАЖА (ИЗ ЖЕЛУДКА) 1. Материал собирается рано утром, до еды, пока пациент еще в постели. 2. Вводят назо-гастральный зонд через нос в желудок. 3. Желудок промывают 25-50 мл охлажденной дистиллированной водой. 4. Далее жидкость отсасывается и помещается в стерильный контейнер. Крышку плотно закрывают. 5. Аккуратно, следуя правилам, удаляют зонд. 6. Материал может храниться не более 2-х часов при комнатной температуре и не более 24-х часов при 2-8С. АБДОМИНАЛЬНАЯ И ПЕРИТОНЕАЛЬНАЯ ЖИДКОСТИ 1. 1-2% раствором йода дезинфицируют кожу в области манипуляции. 2. Посредством чрезкожной пункции (или во время операции) жидкость набирается в шприц. 3. Важно набрать большой объем жидкости (сколько возможно)! Полученную жидкость помещают в стерильный контейнер с крышкой. Крышку плотно закрывают. 4. Допустимо использовать для транспорта и культивирования флаконы для гемокультур, тогда соблюдают те же правила, что и при взятии крови (в этом случае следует заказать исследование 5. Материал хранят в тепле и доставляют в лабораторию силами заказчика при температуре 35С. ПРАВИЛА СБОРА ГРУДНОГО МОЛОКА 1. Перед сцеживанием молока тщательно помойте руки и молочные железы с мылом, обработайте соски и околососковую область ватными тампонами, смоченными 70% спиртом (каждая железа обрабатывается отдельным тампоном). 2. Сцедите первые 5-10 мл в отдельную посуду (т.к. эта порция молока не пригодна для исследования), последующие 4-5 мл сцедите в стерильный контейнер с красной крышкой, старайтесь при этом не касаться краёв контейнера телом. 3. Молоко из каждой железы собирайте в отдельный контейнер. После сцеживания плотно закройте крышку, стараясь не дотрагиваться краев контейнера руками. 4. Промаркируйте каждый контейнер, указав фамилию, инициалы, дату рождения, на каждом контейнере необходимо указать: «правая молочная железа» или «левая молочная железа». 5. Молоко до отправки в лабораторию должно храниться в холодильнике не более 24-х часов. ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ МАЗКОВ У ЖЕНЩИН ДЛЯ МИКРОСКОПИЧЕСКОГО (БАКТЕРИОСКОПИЧЕСКОГО) ИССЛЕДОВАНИЯ 1. Используйте только новые стекла с матовым краем, (или, если у вас в нужный момент не оказалось лабораторных стекол, вы можете использовать свои, но обязательно новые, проверьте, чтоб они были чистыми). 2. Перед тем, как взять мазок очень важно убрать из влагалища избыток выделений и слизи сухой стерильной марлевой салфеткой (т.к. там содержатся разрушенные клетки и лейкоциты, детрит и мертвые микробные клетки). При несоблюдении этого требования описанная лабораторией микроскопическая картина введёт вас в заблуждение, т.к. ядра эпителиальных клеток и детрит встречаются при таком патологическом состоянии, как цитолитическийвагиноз, которого на самом деле может и не быть, а часть микробов не удастся правильно идентифицировать, в связи с тем, что они потеряют способность правильно воспринимать красители. 3. Нанесите мазок в центре стекла и распределите материал равномерно тонким слоем. 4. Маркируйте стекло на противоположной от мазка стороне. 5. Отметьте на стекле локализацию каждого мазка, если их наносится на стекло более одного (например "С", "V", "U"). 6. На матовом крае простым карандашом укажите ФИО пациента, дату рождения. 7. Дайте мазку хорошо высохнуть прежде, чем упаковать перед отправкой. ПРАВИЛА СБОРА МОЧИ ДЛЯ ЖЕНЩИН 1. Перед сбором мочи подготовьте 6 - 10 чистых ватных шариков, сосуд с теплым мыльным раствором (пользуйтесь обычным туалетным мылом), сосуд с теплой кипяченой водой и контейнер для сбора мочи (крышку контейнера приоткройте так, чтобы ее можно было снять одной рукой). 2. Вымойте руки с мылом. 3. Удобно расположитесь на унитазе и разведите колени как можно шире. 4. Вымойте область наружных половых органов, последовательно меняя 4 ватных шарика, смоченных в мыльном растворе. Каждым шариком необходимо провести по направлению от лобка к заднему проходу только один раз, стараясь проникать во все складки. 5. Промойте намыленный участок с помощью двух и более ватных шариков, смоченных в теплой кипяченой воде. Каждым шариком необходимо провести по направлению от лобка к заднему проходу только один раз, стараясь проникать во все складки. 6. Во избежание попадания в мочу выделений из влагалища, во время сбора мочи женщинам, живущим половой жизнью, рекомендуется ввести во влагалище тампон. 7. Снимите крышку с контейнера и возьмите его в руку, стараясь не касаться краев. Приготовьтесь собрать мочу. 8. Удерживая половые губы разведенными, выпустите немного мочи в унитаз, приостановите мочеиспускание, а затем, подставив контейнер под струю мочи, наполните его до половины объема. Постарайтесь не прикасаться контейнером к телу. 9. Открутить крышку пробирки «Уро-тампон» и извлечь аппликатор с губкой. 10. Опустить губчатый тампон в образец мочи на 5 секунд, пока губка полностью не пропитается мочой (вар.1) или непосредственно помочиться на тампон (вар. 2). 11. Вернуть аппликатор с тампоном в пробирку и плотно ее закрыть. 12. Произвести маркировку пробы на этикетке, находящейся на пробирке. Внимание! Губку, находящуюся в пробирке не отжимать. ОТДЕЛЯЕМОЕ УРЕТРЫ 1. Перед взятием мазка на посев проводится туалет наружных половых органов для снижения контаминации пробы с помощью стерильных салфеток и дистиллированной воды. 2. Материал собирают не ранее, чем через 2 часа после мочеиспускания. 3. Для стимуляции выделений нежно массируют уретру, отделяемое собирают стерильным тампоном, входящим в состав транспортной среды Эймс с углем. 4. Если отделяемое получить не удается, в уретру вводят стерильный тампон на глубину 1-2 см, аккуратно вращают его в течение 10 сек., вынимают, помещают в транспортную среду Эймс с углем. 5. Для исследования на микоплазмы транспортной средой является флакончик с бульоном светло-желтого цвета, на трихомонады флакончик с транспортной средой для трихомонад. Для сбора материала используют сухой тампон без среды, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке. 6. Материал хранится, помещенный в транспортную среду, в зависимости от вида исследования ОТДЕЛЯЕМОЕ ВУЛЬВЫ, ПРЕДДВЕРИЯ ВЛАГАЛИЩА 1. Материал берут стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем. 2. При воспалении бартолиниевых желез производят их пункцию. При вскрытии абсцесса железы гной берут стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем, после чего его погружают в пробирку со средой. ОТДЕЛЯЕМОЕ ВЛАГАЛИЩА 1. Материал берут до проведения мануальных исследований. 2. Зеркало и подъемник вводят во влагалище, стерильной салфеткой убирают избыток выделений и слизи. Материал собирают из заднего свода или с патологически измененных участков стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы со средой Эймс с углем. 3. При исследовании на уреа/микоплазмы для сбора материала используют сухой тампон, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке. После того, как материал получен, его суспендируют во флаконе для микоплазм. 4. При посеве на трихомонады для сбора материала используют сухой тампон, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке. После того, как материал получен, его суспендируют во флаконе с транспортной средой для трихомонад. ОТДЕЛЯЕМОЕ ШЕЙКИ МАТКИ 1. Обнажают шейку матки с помощью зеркал и влагалищную ее часть и убирают избыток выделений и слизи стерильной марлевой салфеткой или ватным шариком, смоченными стерильным физиологическим раствором или дистиллированной водой. Далее вытирают салфеткой избыток влаги. 2. Тонкий стерильный тампон (входящий в состав транспортной системы) аккуратно вводят в цервикальный канал и вращают 10 сек., не касаясь стенок влагалища. 3. Для посева можно использовать соскоб слизистой, полученный при диагностическом выскабливании стенок цервикального канала. В этом случае материал переносится на тампон и погружается в пробирку с транспортной средой Эймс с углем. 4. При исследовании на уреа/микоплазмы и трихомонады материал берут так же, как описано выше. СОДЕРЖИМОЕ ПОЛОСТИ МАТКИ 1. Используют специальные инструменты типа шприца-аспиратора, имеющего на зонде покрытие. 2. При введении зонда в полость матки раскрывают наружную оболочку зонда и набирают в шприц содержимое матки. 3. Закрывают наружную оболочку и выводят зонд из матки. 4. Материал из шприца помещают на тампон и погружают в транспортную среду Эймс с углем.   ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ МАЗКОВ У МУЖЧИН ДЛЯ МИКРОСКОПИЧЕСКОГО (БАКТЕРИОСКОПИЧЕСКОГО) ИССЛЕДОВАНИЯ 1. Используйте только новые стекла с матовым краем (или, если в нужный момент у вас не оказалось наших стекол, вы можете использовать свои, но обязательно новые и чистые). 2. Перед тем, как взять мазок из уретры очень важно провести гигиеническую обработку кожи головки полового члена с помощью мыла и воды для уменьшения контаминации мазка посторонней флорой. После обработки осушить головку полового члена с помощью стерильной марлевой салфетки. 3. С помощью специальных инструментов, используемых в вашем медицинском центре, соберите отделяемое уретры, нанесите мазок в центре стекла и распределите материал равномерно тонким слоем. 4. Если исследуется секрет простаты, мазок наносится на стекло, распределяется равномерно тонким слоем. 5. Обязательно дайте мазку хорошо высохнуть прежде, чем упаковывать перед отправкой. 6. На матовом крае простым карандашом укажите ФИО пациента, дату рождения. ПРАВИЛА СБОРА МОЧИ У МУЖЧИН 1. Вымойте руки с мылом. 2. Отведите назад крайнюю плоть (если она не обрезана), головку полового члена вымойте с мылом теплой кипяченой водой, просушите с помощью чистой салфетки. 3. Подготовьте контейнер, приоткрыв крышку контейнера так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки. 4. Выпустите небольшое количество мочи в унитаз. Приостановите мочеиспускание. 5. Удерживая крайнюю плоть в отведенном положении, направьте струю мочи в контейнер и наполните его до половины объема, при этом старайтесь не касаться краев контейнера. Если целью исследования является выявление уреа/микоплазм, то объем мочи должен быть не менее 40-50 мл (это почти полный контейнер). 6. Тщательно закройте контейнер крышкой. В контейнер «Уро-тампон» 1. Вымойте руки с мылом. 2. Отведите назад крайнюю плоть (если она не обрезана), головку полового члена вымойте с мылом теплой кипяченой водой, просушите с помощью чистой салфетки. 3. Подготовьте контейнер, приоткрыв крышку контейнера так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки. 4. Выпустите небольшое количество мочи в унитаз. Приостановите мочеиспускание. 5. Удерживая крайнюю плоть в отведенном положении, направьте струю мочи в контейнер и наполните его до половины объема, при этом старайтесь не касаться краев контейнера. Объем мочи должен быть не менее 1/3 контейнера. 6. Открутить крышку пробирки «Уро-тампон» и извлечь аппликатор с губкой. 7. Опустить губчатый тампон в образец мочи на 5 секунд, пока губка полностью не пропитается мочой (вар.1) или непосредственно помочиться на тампон (вар. 2). 8. Вернуть аппликатор с тампоном в пробирку и плотно ее закрыть. 9. Произвести маркировку пробы на этикетке, находящейся на пробирке. Внимание! Губку, находящуюся в пробирке не отжимать. ОТДЕЛЯЕМОЕ УРЕТРЫ 1. Материал собирают не ранее, чем через 2-3 часа после мочеиспускания. 2. Перед взятием мазка из уретры, кожу обрабатывают салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или дистиллированной водой. Высушивают стерильной салфеткой. 3. В уретру на глубину 2-4 см аккуратно вводят стерильный тампон на тонком аппликаторе, входящий в состав транспортной системы Эймс с углём. Нежно, но интенсивно вращают им внутри в течение 10 сек., после чего тампон помещают в пробирку со средой. 4. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы или трихомонады, для сбора материала используется тампон без среды, находящийся в индивидуальной стерильной упаковке. Клетки и слизь с тампона тщательно суспендируют в соответствующий флакон с жидкой средой (просьба, не путать флаконы для трихомонад и микоплазм). СЕКРЕТ ПРОСТАТЫ 1. Перед сбором материала проводят тщательный туалет наружных половых органов с помощью мыла и кипяченой воды. 2. Проводят ручной массаж простаты через прямую кишку. 3. Материал собирают в стерильную пробирку, а затем используют транспортную систему со средой Эймс. Пропитайте жидкостью стерильный тампон и поместите его в пробирку с транспортной средой. 4. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы, собранный материал в количестве 0,5 мл (несколько капель) помещается во флакончик с транспортной средой для микоплазм. 5. При посеве на трихомонады секрет простаты сначала собирается в стерильный контейнер с крышкой, а затем аккуратно переливается во флакончик с транспортной средой для трихомонад в количестве 0,5-1,0 мл. Можно сразу собрать секрет простаты во флакончик. ОТДЕЛЯЕМОЕ ЯЗВЫ ПОЛОВОГО ЧЛЕНА 1. Очищают поверхность язвы тампоном, смоченным физиологическим раствором, корочки удаляют. 2. Производят соскоб язвы до появления серозной жидкости. 3. Стерильной салфеткой удаляют жидкость и органические наслоения. (Следует избегать кровоточивости). 4. Надавливают у основания язвы до появления серозной жидкости. 5. Аспирируют выделившуюся жидкость шприцом с тонкой иглой. 6. Материал из шприца переносят на тампон, который потом погружают в пробирку со средой Эймс с углем. ПРАВИЛА СБОРА СПЕРМЫ (бакпосев) 1. Перед сбором материала тщательно вымойте руки с мылом, а затем проведите туалет наружных половых органов также с мылом и водой. Головку полового члена и крайнюю плоть высушите стерильной салфеткой. 2. Подготовьте контейнер, крышку контейнера приоткройте так, чтобы ее можно было снять одной рукой. Не дотрагивайтесь руками до внутренних стенок контейнера и крышки. 3. Материал получают путем мастурбации и собирают в стерильный контейнер. Если объем полученной спермы очень мал, можно использовать транспортную систему со средой Эймс с углем. Для этого пропитайте жидкостью стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы и поместите его в пробирку со средой. Возможна доставка материала в контейнере. 4. Обратите внимание на то, чтобы крышка на контейнере была хорошо закрыта (во избежание вытекания материала). 5. Если проводится исследование на уреа/микоплазмы, собранный материал в количестве 0,5 мл (несколько капель) помещается во флакончик с транспортной средой для микоплазм. 6. При культуральном исследовании на влагалищную трихомонаду предпочтительней исследовать секрет простаты, который собирают в стерильную пробирку и переносят во флакон со средой для транспортировки и культивирования трихомонад. Доставка осуществляется при температуре 35С в наиболее короткие сроки. МАЗКИ ИЗ ЗЕВА Материал не следует брать при воспаленном надгортаннике, так как может возникнуть обструкция дыхательных путей. 1. Мазок берут натощак или через 2-3 ч после еды и питья. 2. Обратите внимание на то, что перед манипуляциями не надо полоскать рот. 3. Аккуратно прижимают язык шпателем, стерильным тампоном от транспортной системы Эймс с углем проводят между дужками миндалин, по язычку и задней стенке глотки, не касаясь губ, щек и языка. При наличии гнойных наложений мазок желательно брать на границе здоровых и пораженных тканей (т.к. именно там находится наибольшее количество микробов). 4. Тампон погружают в пробирку с транспортной средой. МАЗКИ ИЗ НОСА 1. Для обоих носовых ходов используется один тампон с транспортной средой Эймс. 2. Перед взятием мазков не надо промывать носовые ходы. 3. Вводят тампон в носовой ход на глубину 2-2,5 см на уровне носовой раковины. 4. Прижать тампон крылом носа к носовой перегородке и вращательными движениями тампона собирают материал со слизистой носа. 5. Аналогичным образом берут материал в другом носовом ходе. 6. Тампон погрузить в пробирку с транспортной средой. МАЗКИ ИЗ РОТОГЛОТКИ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ НА КОКЛЮШ 1. Материал берется натощак или через 2-3 часа после еды или питья. 2. Обратите внимание на то, что перед манипуляциями не надо полоскать рот. 3. Для взятия материала использовать транспортную среду с назофарингеальным тампоном на тонком гибком аппликаторе, что необходимо для достижения области ротоглотки (транпортная среда в пробирке с синей крышкой). Пациента усаживают на стул против источника света. После фиксации языка деревянным шпателем тампон заводят за корень языка вниз и проводят стерильным тампоном по задней поверхности ротоглотки. При выполнении данной процедуры стараться не прикасаться к языку и слизистым щек. Тампон погрузить в пробирку с транспортной средой. МАЗКИ ИЗ НОСОГЛОТКИ ДЛЯ ИССЛЕДОВАНИЯ НА МЕНИНГОКОКК 1. Материал берется натощак или через 2-3 часа после еды или питья. 2. Обратите внимание на то, что перед манипуляциями не надо полоскать рот. 3. Для взятия материала использовать транспортную среду с назофарингеальным тампоном на тонком гибком аппликаторе, что необходимо для достижения области носоглотки (транпортная среда в пробирке с синей крышкой). 4. Пациента усаживают на стул против источника света. После фиксации языка деревянным шпателем тампон заводят под мягкое нёбо за маленький язычок вверх и проводят стерильным тампоном по передней поверхности носоглотки. При выполнении данной процедуры стараться не прикасаться к языку или слизистым щек. 5. Тампон погрузить в пробирку с транспортной средой. АСПИРАТ ИЗ ПАЗУХ 1. Производят пункцию верхнечелюстной пазухи, соблюдая правила асептики. 2. Далее содержимое аспирационного шприца переносят на стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем (можно небольшое количество жидкости добавить в пробирку с транспортной средой). ЖИДКОСТЬ ПРИ ТИМПАНОЦЕНТЕЗЕ 1. Очищают наружный слуховой проход слабым раствором антисептика. 2. Если барабанная перепонка не нарушена, ушной канал промывают мыльным раствором, ополаскивают, высушивают, и, используя аспирационную технику, набирают жидкость в шприц. Далее аспират из шприца переносят на стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем (можно небольшое количество жидкости добавить в пробирку с транспортной средой). 3. При прободении барабанной перепонки экссудат собирают стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем, используя слуховое зеркало. 4. После взятия материала тампон погружают в пробирку со средой. ОТДЕЛЯЕМОЕ ИЗ НАРУЖНОГО СЛУХОВОГО ПРОХОДА. 1. Обрабатывают кожу 70% спиртом и промывают физиологическим раствором. 2. При помощи влажного (смоченного стерильным физиологическим раствором) тампона из ушного канала удаляют соринки и корки. 3. Материал из очага берут стерильным тампоном, входящим в состав транспортной системы Эймс с углем, интенсивно вращая им в наружном слуховом проходе (но осторожно, чтоб не повредить барабанную перепонку). 4. После взятия материала тампон погружают в пробирку со средой. ПРАВИЛА СБОРА МОКРОТЫ 1. Исследованию подлежит утренняя мокрота, выделяющаяся во время приступа кашля. 2. Перед откашливанием необходимо почистить зубы и прополоскать рот кипяченой водой с целью механического удаления остатков пищи, слущенного эпителия и микрофлоры ротовой полости. Следите за тем, чтобы в контейнер не попала слюна и носоглоточная слизь (особенно при насморке!). 3. Выделившуюся мокроту собирают в стерильный контейнер с красной крышкой. 4. Крышку плотно закрывают, чтобы материал не вытек. 5. Если мокрота отделяется плохо, накануне пациенту дают отхаркивающие средства. 6. Для микроскопического исследования мазок на стекле делать не надо, мокроту отправляют в лабораторию в контейнере.   ТРАХЕОБРОНХИАЛЬНЫЕ СМЫВЫ 1. Исследуют при отсутствии мокроты или невозможности ее выделить естественным путем. 2. Гортанным шприцем в трахею вводят не более 5 мл стерильного физиологического раствора с последующим его отсасыванием в стерильную пробирку с желтой крышкой. 3. Бронхиальные смывы, в том числе вблизи очага воспаления, могут быть сделаны с помощью бронхоскопа. 4. Смывную жидкость помещают в стерильный контейнер с крышкой. Крышку плотно закрывают. ПЛЕВРАЛЬНАЯ ЖИДКОСТЬ 1. Кожу перед пункцией обрабатывают 2% раствором йода, а затем 70% этиловым спиртом. 2. Делают прокол и собирают жидкость в стерильную пробирку с соблюдением правил асептики. 3. Во время получения материала участвуют двое, один пунктирует, другой открывает крышку пробирки в нужный момент, стараясь не прикасаться руками к верхнему краю пробирки и внутренней поверхности крышки. ОТДЕЛЯЕМОЕ КОНЬЮНКТИВЫ 1. Материал для посева забирается утром до умывания. 2. При наличии обильного гнойного отделяемого используют стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем. Гной собирают с внутренней поверхности нижнего века движением от наружного к внутреннему углу глазной щели. 3. Необходимо следить, чтобы при моргании ресницы не касались тампона (придерживать веки руками). 4. При скудном отделяемом тампон предварительно смачивают стерильным физиологическим раствором или стерильной дистиллированной водой. Избыток влаги отжимают о внутреннюю поверхность ёмкости, далее собирают материал, как описано в пункте 1. СОСКОБ С РОГОВИЦЫ 1. В каждый глаз закапывается местный анестетик. 2. При помощи стерильной лопаточки делают соскоб с язвы или другого образования. 3. Если больной применяет контактные линзы, необходимо исследовать их внутреннюю поверхность. 4. Из полученного материала делают мазок на стекле для микроскопического исследования, для этого используют тампон без транспортной среды в индивидуальной стерильной упаковке. 5. На посев берут мазок тампоном, входящим в состав транспортной системы со средой Эймс с углем. ОТДЕЛЯЕМОЕ ПОВЕРХНОСТНЫХ РАН 1. Поверхность кожи вокруг раны обрабатывают ватным тампоном, смоченным 70% этиловым спиртом или другим антисептиком. 2. После высыхания дезинфектанта, стерильной марлевой салфеткой удаляют детрит, некротические массы, гной. 3. Отделяемое из раны для посева берут с помощью тампона, входящего в состав транспортной системы Эймс с углем, для микроскопического исследования - с помощью тампона без среды, находящегося в индивидуальной стерильной упаковке. Материал на тампон собирают круговыми вращательными движениями от центра к периферии пораженного участка в течение 5-10 секунд (во время взятия материала не касаются окружающих рану тканей, кожи и слизистых) и погружают в пробирку с транспортной средой. СОДЕРЖИМОЕ ГЛУБОКИХ РАН И АБСЦЕССОВ 1. Удалите поверхностный экссудат салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или 70% спиртом. 2. После дезинфекции поверхности раны и высыхания дезинфектанта врач с помощью шприца и иглы берет аспират из глубины раны. Если имеется везикула, берется жидкость и клетки у основания дефекта. 3. Если первоначально аспират взять не удалось, подкожно вводят стерильный физиологический раствор и повторно пытаются взять аспират. 4. Далее аспират помещают в стерильную пробирку. 5. Стерильный тампон от транспортной системы пропитывают полученной жидкостью и погружают в пробирку со средой. 6. При взятии материала во время операции отсылают вместе с аспиратом и кусочек ткани, образующей стенку абсцесса. Его можно поместить с помощью этого же тампона вглубь транспортной среды в ту же пробирку. ЦЕЛЛЮЛИТ 1. Поверхность кожи над местом наибольшего воспаления обрабатывают салфеткой, смоченной стерильным физиологическим раствором или 70% спиртом. 2. С помощью иглы и шприца аспирируют содержимое из мягких тканей, далее через эту же иглу набирают в шприц небольшое количество стерильного физиологического раствора. 3. Жидкостью из шприца пропитывают тампон, который погружают в транспортную среду Эймс с углем, часть жидкости (несколько капель) можно добавить в пробирку. ПРОЛЕЖНИ, ЯЗВЫ 1. Поверхность пролежня (язвы) и кожу вокруг обрабатывают стерильным физиологическим раствором. 2. Материал получают путем энергичного надавливания тампоном на дно язвы. Поверхностный экссудат для исследования непригоден. 3. Тампон с полученным материалом помещают в транспортную среду Эймс с углем. ПРАВИЛА ВЗЯТИЯ КРОВИ ПРИ ПОСЕВЕ НА СТЕРИЛЬНОСТЬ Перед процедурой взятия крови выньте флаконы для гемокультур из холодильника. Для взрослых и детей (весом > 40 кг) используют 2 флакона на один анализ с оранжевой и серой пластиковыми крышками. Для детей раннего возраста, чей вес менее 40 кг - 1 флакон с розовой крышкой (педиатрический). Флаконы должны быть согреты до комнатной температуры. Для ускорения процесса можно поместить флаконы в ёмкость с тёплой (но не горячей) водой. Перед взятием крови отломить у флаконов пластиковые крышки и для дезинфекции обработать поверхность внутренних крышек салфеткой, смоченной 70% этиловым спиртом в течение 1 минуты. 1. Кожу над пунктируемой веной тщательно обрабатывают 70% этиловым спиртом, затем 1-2% настойкой йода 30 сек. 2. После высыхания обработанного участка, не прикасаясь руками к обработанной поверхности, производят венепункцию. 3. Для взятия крови используется та же технология, что и при взятии крови в пробирку (в нашем случае, узкое и длинное горлышко флакона вставляется в холдер вместо пробирки и прокалывается резиновая крышка). 4. Флаконы, как и пробирки, имеют отрицательное давление, поэтому кровь набирается до тех пор, пока давление не станет равным атмосферному, что соответствует ~ 10 мл. В педиатрическом флаконе отрицательное давление соответствует объёму 3-5 мл. 5. Флаконы должны быть промаркированы с указанием фамилии, инициалов, даты рождения и даты взятия материала. 6. После завершения процедуры йод удаляют с кожи салфеткой с 70% этиловым спиртом и область прокола закрывают лейкопластырем. Попросите пациента подержать руку согнутой в локтевом сгибе для того, чтоб предотвратить образование гематомы. В случаях остро возникшего сепсиса следует проводить 2-3-кратные исследования с интервалом 30-60 мин. Кровь на исследование рекомендовано брать во время подъема температуры, а не на высоте лихорадки. СОДЕРЖИМОЕ ИЗ ЗУБО-ДЕСНЕВОГО КАРМАНА 1. Осторожно промойте десневой карман и прилегающую поверхность зуба стерильным физиологическим раствором, удалив слюну, остатки пищи и зубной налёт. 2. Осторожно удалите с помощью инструментов участок воспаленной ткани и, соблюдая правила асептики, перенесите его в пробирку с питательным бульоном. Энергично перемешайте содержимое с помощью тампона, входящего в транспортную систему со средой Эймс с углем так, чтобы он хорошо пропитался жидкостью. Далее тампон поместите в пробирку со средой. 3. Если получить биоптат не удается, то энергично потрите стерильным бумажным или другим подходящим по размеру аппликатором (или зубной нитью) в десневом кармане. Стерильными ножницами отрежьте исследуемый край аппликатора над открытой пробиркой с бульоном, так чтобы он попал в неё. Далее действуйте, как описано выше. Для исследования непригоден весь аппликатор, т.к. часть его контаминирована посторонней флорой с перчаток персонала. АСПИРАТ ИЗ ВЕРХНЕ-ЧЕЛЮСТНОЙ ПАЗУХИ 1. Производят пункцию верхнечелюстной пазухи. 2. Далее содержимое аспирационного шприца переносят на стерильный тампон, входящий в состав транспортной системы Эймс с углем. АБСЦЕСС (ОТКРЫТЫЙ) 1. Удалите поверхностный экcсудат салфеткой, см