При отсутствии агглютинации можно переливать кровь, а при подозрении на агглютинацию кровь не должна переливаться.

РЕЗУЛЬТАТЫ

определения группы исследуемой крови цоликлонами.

Группы исследуемой крови	Цоликлоны анти – А анти - В
0(I)	-	-
А (II)	+	-
В (III)	-	+
АВ (IV)	+	+

3. Определить резус-фактор.

МЕТОД ОПРЕДЕЛЕНИЯ РЕЗУС - ФАКТОРА С ПРИМЕНЕНИЕМ УНИВЕРСАЛЬНОГО РЕАГЕНТА

ü Для этого на дно пробирки необходимо внести 1 каплю стандартного реагента антирезус (универсального реагента) и 1 каплю исследуемой крови (или эритроцитов).

ü Содержимое пробирки перемешать встряхиванием и затем медленно поворачивать, наклонив пробирку почти горизонтально, таким образом, чтобы содержимое растекалось по ее стенкам. Затем в пробирку добавить 2 - 3 мл физиологического раствора хлористого натрия и перемешать, не взбалтывая , путем 2-3 кратного перевертывания пробирки . Через 2 минуты оценку производят визуально. Наличие агглютинации в виде крупных хлопьев из эритроцитов на фоне просветленной жидкости указывает на резус - положительную принадлежность исследуемой крови

ü Отсутствие агглютинации (в пробирке гомогенно окрашенная жидкость) указывает на резус - отрицательную принадлежность исследуемой крови.

4. Показать проведение индивидуальной пробы на совместимость.

ПРОБЫ НА СОВМЕСТИМОСТЬ ПЕРЕЛИВАЕМОЙ КРОВИ

Перед каждым переливанием крови должна проводиться проба на групповую совместимость путем определения (независимо от показателей этикетки) группы крови донора и реципиента по системе АВО.

ü (ИНДИВИДУАЛЬНАЯ ПРОБА НА СОВМЕСТИМОСТЬ) Для этого большая капля сыворотки реципиента смешивается с маленькой каплей (10 : 1) крови донора и наблюдается 5 минут при покачивании тарелки.

Баккала способ

Баккала способ (истор.; С.А. Баккал, советский хирург) —
1) способ обработки операционного поля, заключающийся в смазывании кожи 1% спиртовым раствором бриллиантовой зелени;
2) способ обработки рук хирурга путем смазывания их баккалином (смесь хинозола с 2% спиртовым раствором бриллиантовой зелени) в течение 2 мин.;
3) способ стерилизации кетгута, заключающийся в его выдерживании в течение 3 суток в 1% спиртовом растворе малахитовой зелени с последующим хранением в спирте.

8. Обработка операционного поля хлоргексидином биглюконатом.

Воздействие антисептических средств.

Используемые для обработки рук химические антисептики должны иметь следующие свойства:
- обладать сильным антисептическим действием,
- быть безвредными для кожи хирурга,
- быть доступными и дешевыми (применяются в больших объемах).

Дубление.

Дубление необходимо для закрытия пор кожи с целью поддержания максимально длительной стерильности ее поверхности.

Современные способы обработки рук не требуют специального дубления используются пленкообразующие антисептики или антисептики с элементом дубления).

13. Показать технику интубации.

Успешная интубация часто зависит от правильного положения больного. Во время ларингоскопии высота операционного стола должна быть отрегулирована таким образом, чтобы голова больного располагалась на уровне мечевидного отростка интубирующего — это позволяет избежать чрезмерного напряжения мышц спины анестезиолога. При прямой ларингоскопии происходит смещение мягких тканей глотки, что обеспечивает прямую линию обзора от преддверия рта до входа в гортань.

N.B.Умеренный подъем головы при одновременном разгибании в атлантозатылочном сочленении создает искомое улучшенное(«принюхивающееся») положение. Сгибание в нижнешейном отделе достигается при подкладывании под голову небольшой подушки.

Рисунок.Улучшенное («принюхивающееся») положение больного при интубации клинком Макинтоша.

Подготовка к индукции и интубации включает также обязательную предварительную оксигенацию (преоксигенацию). Преоксигенация заключается в нескольких глубоких вдохах 100 % кислорода, что обеспечивает дополнительный уровень безопасности, если после индукции анестезии возникают затруднения при вентиляции. Преоксигенацию не проводят, если больной не переносит наложение маски и масочную вентиляцию — при условии, что у него нет сопутствующих заболеваний легких.
После индукции общей анестезии анестезиолог становится своего рода хранителем больного. Поскольку общая анестезия угнетает защитный корнеальный рефлекс, следует предпринять меры против непреднамеренного повреждения роговицы. Для этого накладывают глазную мазь на вазелиновой основе и закрывают глаза защитными салфетками.

Оротрахеальная интубация

Ларингоскопию обычно выполняют недоминирующей рукой (для большинства людей это левая рука). Рот больного широко открывают, клинок вводят по правой стороне ротоглотки, избегая повреждения зубов. Язык смещают влево и поднимают клинком вверх, к своду глотки. Кончик изогнутого клинка вводят в валлекулу (ямку, располагающуюся на передней поверхности надгортанника), тогда как кончиком прямого следует приподнимать непосредственно надгортанник. Рукоятку ларингоскопа продвигают вверх и вперед перпендикулярно к нижней челюсти, пока в поле зрения не появятся голосовые связки (см. рисунок ниже). Следует избегать опоры на зубы. Эндотрахеальную трубку берут в правую руку и проводят через раскрытую голосовую щель. Манжетка должна располагаться в верхних отделах трахеи, но ниже гортани. Ларингоскоп выводят изо рта, вновь избегая повреждения зубов.

Рисунок.Типичный вид голосовой щели при использовании ларингоскопа с изогнутым клинком.

N.B. Чтобы уменьшить повреждение слизистой оболочки трахеи, манжетка заполняется минимальным объемом, обеспечивающим герметичность при ИВЛ.

Ощущения от сдавливания «пилотного» баллона пальцами не являютсядостоверным признаком полноценного заполнения манжетки.

Сразу же после интубации необходимо провести аускультацию над легкими и в эпигастрии, а также оценить капнографическую кривую на мониторе, чтобы подтвердить положение трубки в трахее. При малейших сомнениях относительно положения трубки благоразумнее удалить трубку и вентилировать больного через лицевую маску. Если же трубка находится в трахее, ее закрепляют в нужном положении тесемками или лейкопластырем (см. рисунок ниже).

Точки аускультации для проверки положения эндотрахеальной трубки: над верхними отделами легких и эпигастрием, метод фиксации эндотрахеальной трубки липким водоустойчивым пластырем

N.B. Хотя непрерывная капнографическая кривая правильной формы — наиболее достоверный признак пребывания трубки в дыхательных путях, она не позволяет исключить интубацию бронха. Ранним признаком попадания трубки в бронх является увеличение пикового давления вдоха.

Несложный прием позволяет подтвердить правильное положение трубки: при кратковременном сжимании контрольного баллона перераздутая манжетка пальпируется другой рукой в яремной вырезке.

N.B. Манжетка не должна определяться выше уровня перстневидного хряща, так как ее длительное пребывание в гортани может привести к охриплости голоса в послеоперационном периоде.

Положение трубки можно подтвердить при рентгенографии грудной клетки, но обычно в этом не возникает необходимости. Представленная выше методика относится к больным, находящимся без сознания. Больные в сознании тяжело переносят оротрахеальную интубацию. Внутривенная седация, орошение ротоглотки аэрозолем местного анестетика, регионарная блокада и постоянное общение с больным во время процедуры — все это значительно облегчает интубацию при сохраненном сознании.

При неудавшейся интубации повторные попытки при тех же условиях обычно приводят к отрицательным результатам. Для снижения риска повторной неудачи следует изменить условия интубации: поменять положение больного, взять трубку меньшего размера, использовать проводник, поменять клинок, попытаться интубировать через нос или даже попросить помощи у другого анестезиолога.

N.B. Если же возникают проблемы с вентиляцией через лицевую маску, необходимо немедленно обеспечить проходимость дыхательных путей любым альтернативным способом: использовать ларингеальную маску, пищеводно-трахеальную комбинированную трубку, коникотомию в сочетании с высокочастотной струйной вентиляцией или даже трахеостомию.

14. Показать виды укладки биксов.

Существует три вида укладки стерилизационных биксов.

Универсальная укладка, когда в бикс кладут все, что может понадобиться в течение рабочего дня в перевязочной или малой операционной.

Видовая укладка, когда в бикс кладут один вид материала или белья. Применяется в больших операционных.

Целенаправленная укладка, когда в бикс кладут все, что необходимо для одной определенной операции, например для перидуральной анестезии.

15. Показать/рассказать проведение пробы на резус-совместимость.

ü ПРОБА НА СОВМЕСТИМОСТЬ ПО РЕЗУС - ФАКТОРУ С ПРИМЕНЕНИЕМ ЖЕЛАТИНЫ является наилучшей, так как дает гораздо меньше ошибок.

Для этого на дно пробирки необходимо поместить одну маленькую капля крови донора , затем накапать две капли подогретого до разжижения 10-% раствора желатины и 2-3 капли сыворотки больного . Содержимое пробирки перемешать путем встряхивания и поместить в водяную баню при температуре 48° 50°С на 10 минут. После этого долить в пробирку 5-8 мл физиологического раствора хлористого натрия, подогретого в той же водяной бане.

Если в пробирке наблюдается агглютинация эритроцитов - кровь донора не совместима с кровью больного и не должна быть ему перелита!

Однако, существование массы других антигенов обусловливает обязательное проведение пробы на биологическую совместимость при каждом переливании крови.

16. Показать определение площади ожогов.

17. Рассказать определение глубины ожогов.

18. Написать протокол переливания крови.

Протокол трансфузии (переливания)

донорской крови и (или) ее компонентов

Ф.И.О. реципиента: _______________ N медицинской карты: ________________

Дата трансфузии (переливания) донорской крови и (или) ее компонентов:

"__" _______________ 20__ г.

Время начала трансфузии (переливания) донорской крови и (или) ее

компонентов реципиенту: ___________________________________________________

Время окончания трансфузии (переливания) донорской крови и (или) ее

компонентов реципиенту: ___________________________________________________

Группа крови реципиента: _______________________________________________

Резус-принадлежность: __________________________________________________

Фенотип: _______________________________________________________________

Определение резус-принадлежности реципиента проводилось:

в лаборатории/экспресс-методом: ___________________________________________

Исследование антител выявлены/не выявлены: _____________________________

Медицинские показания к проведению трансфузии (переливания) донорской

крови и (или) ее компонентов: _____________________________________________

_________________________________________ Hb __________ Ht ________________

Трансфузионный анамнез: трансфузии были/не были: ______________________

Трансфузии по индивидуальному подбору в прошлом: были/не были _________

___________________________________________________________________________

13. Реакции и (или) осложнения, возникшие у реципиента в связи с

трансфузией (переливанием) донорской крови и (или) ее компонентов: ________

___________________________________________________________________________

Акушерский анамнез (количество беременностей): ________________________

Особенности течения (самопроизвольные аборты, гемолитическая болезнь

новорожденного и другое): _________________________________________________

___________________________________________________________________________

Макроскопическая оценка крови и (или) ее компонента: пригодна к

переливанию/не пригодна к переливанию: ____________________________________

___________________________________________________________________________

Данные с этикетки контейнера с кровью и (или) ее компонентом: _________

Наименование компонента крови: ________________________________________

Наименование организации, заготовившей донорскую кровь и (или) ее

компоненты: _______________________________________________________________

___________________________________________________________________________

___________________________________________________________________________

Дата заготовки донорской крови и (или) ее компонентов: ________________

Срок годности донорской крови и (или) ее компонентов: _________________

N контейнера донорской крови и (или) ее компонентов: __________________

Объем донорской крови и (или) ее компонентов (мл): ____________________

Код донора крови и (или) ее компонентов (ФИО донора): _________________

Группа крови донора крови и (или) ее компонентов: _____________________

Резус-принадлежность донора крови и (или) ее компонентов: _____________

-------------------------------------------------

¦ ¦

¦ ¦

¦ Место для этикетки ¦

¦ ¦

¦ ¦

-------------------------------------------------

Перед трансфузией (переливанием) донорской крови и (или) ее компонентов

проведены контрольные проверки показателей:

Группа крови реципиента ___________ Резус-принадлежность реципиента _______

Группа крови донора <*> _________ Резус-принадлежность донора <*> _________

При определении показателей использовались реактивы ___________________

___________________________________________________________________________

(наименование с указанием серии и срока годности)

Проведены пробы на индивидуальную совместимость <*>:

___________________________________________________________________________

___________________________________________________________________________

указать метод, используемые реактивы (наименование, серию, срок годности),

результат проведения каждой пробы

Биологическая проба: __________________________________________________

указать метод, результат проведения пробы

Способ трансфузии (переливания) донорской крови и (или) ее компонентов:

___________________________________________________________________________

Осложнения во время трансфузии (переливания) донорской крови и (или) ее

компонентов: ______________________________________________________________

Наблюдение за состоянием реципиента:

----------------------------------------------------------------------------------

¦ ¦ Артериальное ¦ Частота ¦ Температура, ¦ Диурез, цвет ¦

¦ ¦ давление, мм ¦ пульса, ¦ °C ¦ мочи ¦

¦ ¦ рт. ст. ¦ уд./мин. ¦ ¦ ¦

+------------------+---------------+--------------+--------------+---------------+

¦Перед переливанием¦ ¦ ¦ ¦ ¦

+------------------+---------------+--------------+--------------+---------------+

¦Через 1 час после ¦ ¦ ¦ ¦ ¦

¦переливания ¦ ¦ ¦ ¦ ¦

+------------------+---------------+--------------+--------------+---------------+

¦Через 2 часа после¦ ¦ ¦ ¦ ¦

¦переливания ¦ ¦ ¦ ¦ ¦

+------------------+---------------+--------------+--------------+---------------+

¦<**> Через 3 часа ¦ ¦ ¦ ¦ ¦

¦после переливания ¦ ¦ ¦ ¦ ¦

-------------------+---------------+--------------+--------------+----------------

Врач, проводивший трансфузию (переливание) донорской крови и (или) ее

компонентов: ______________________

___________________________________ ___________________________

(ФИО) (подпись)

19. Показать дыхательные контуры.

Наркозные аппараты

Наркозные аппараты предназначены для создания газовой смеси с точным дозированием газовых и летучих наркотических веществ и обеспечения оптимальных условий газообмена в легких. Вентиляция в наркозных аппаратах производится ручным способом или с помощью аппаратов ИВЛ.

Принципиальное устройство наркозного аппарата

Основными элементами любого наркозного аппарата являются: 1) источник газов (кислорода, закиси азота, циклопропана), 2) дозиметр газов, 3) испаритель, 4) дыхательный контур.

Источник газов. Газы находятся в баллонах. Баллоны с кислородом окрашены в голубой цвет, с закисью азота - в серый, с циклопропаном - в красный. Баллоны располагаются вне операционного блока в специально отведенном месте, откуда по трубам поступают в операционную. Чтобы уменьшить давление кислорода и закиси азота на выходе из баллона, применяют редукторы, уменьшающие давление до 3-4 атм.

Дозиметр. Обеспечивает подачу кислорода и наркотических препаратов в дыхательную систему в точных концентрациях. В настоящее время широко применяются ротационные дозиметры - ротаметры поплавкового типа. Внутри стеклянной трубки находится поплавок, который смещается газовым потоком идущим снизу вверх. По смещению поплавка определяется минутный расход газа в литрах в минуту.

Испаритель. Предназначен для превращения жидких анестетиков в пар и обеспечения дозированного поступления его в дыхательную систему. Испаритель представляют собой банку, куда заливается наркотическое вещество. Пары анестетика через клапан направляются в контур наркозного аппарата. Наркотическое вещество в современных испарителях дозируются в объемных процентах.

Дыхательный контур. Дыхательный контур обеспечивает подачу анестетиков и кислорода в дыхательные пути и выведение из легких выдыхаемой смеси. Для проведения ингаляционного наркоза возможно применение одного из четырех возможных контуров наркотизации.

Различают: открытый, полуоткрытый, полузакрытый, закрытый.

Открытый контур – во время вдоха в дыхательные пути больного поступает атмосферный воздух с примесью наркотического вещества, а выдох производится наружу. Схема контура - «вдох из атмосферы, выдох в атмосферу». Недостатки открытого контура - большой расход наркотического вещества, загрязнение воздуха операционной, которым дышат сотрудники.

Полуоткрытый контур – вдох осуществляется из аппарата, где создается смесь кислорода с наркотическим веществом, а выдох в атмосферу. Схема контура - «вдох из аппарата, выдох в атмосферу». Для больного это самый безопасный вариант. Недостатки - большой расход наркотического вещества, загрязнение воздуха операционной.

Полузакрытый контур - больной вдыхает дыхательную смесь из аппарата, а выдох происходит частично в атмосферу, частично в аппарат. При этом варианте происходит частичная рециркуляция наркотической смеси в системе «аппарат – легкие больного».

Поступающая в аппарат выдыхаемая смесь, проходя через адсорбер, освобождается от углекислоты и в дыхательной системе аппарата смешивается с наркотической смесью, вновь поступает к больному. Схема контура - «вдох из аппарата, выдох частично в аппарат, частично в атмосферу»

Закрытый контур.Дыхательная система «аппарат – легкие больного» полностью изолирована от внешней атмосферы. Вдох осуществляется из аппарата, выдох – полностью в аппарат. Выдыхаемая газонаркотическая смесь поступает в аппарат и в адсорбере освобождается от углекислоты. Затем, соединяясь с вновь образующейся наркотической смесью, поступает к больному, Таким образом, происходит полная рециркуляция наркотической смеси. Схема контура - «вдох из аппарата, выдох в аппарат» Преимуществом метода является экономичность и изолированность от окружающей среды.

В настоящее время наиболее часто используются полуоткрытый и полузакрытый контуры.

Дыхательный контур наркозного аппарата состоит из адсорбера, дыхательных клапанов и дыхательного мешка, соединенных между собой шлангами Адсорбер осуществляет поглощение СО₂, для этого он содержит натронную известь. Клапаны обеспечивают регуляцию направления газовых потоков в аппарате. Дыхательный мешок применяется для ручного нагнетания смеси в дыхательные пути, а также является резервуаром для накопления избыточной смеси

Владеть:

1. Отобрать химические антисептики.

Вообще существует 17 групп хим антисептиков..

1) Группа галоидов:

Йод

Йодинол

Йодопирон

Йодонат

Повидон-йодин

Раствор Люголя

Хлорамин Б

2) Соли тяжелых металлов:

Сулема

Оксицианид ртути

Нитрат серебра

Протаргол, колларгол

Оксид цинка

3) Спирты:

Этиловый спирт (70⁰ или 90⁰)

(АХД-2000 АХД-2000-специаль..для обработки рук хирурга и инструментов широко используются в настоящее время)

4) Альдегиды:

Формалин

Лизол

5) Фенолы:

Карболовая к-та

Тройной раствор ( содержит 20г формалина, 10г карболовой к-ты, 30 г соды и дистилл воду)

6) Красители:

Бриллиантовый зеленый

Метиленовый синий

7) Кислоты:

Борная кислота

Салициловая кислота

8) Щелочи:

Нашатырный спирт

9) Окислители:

Перекись водорода

Перманганат калия

10) Детергенты :

Антидеполяризующие..

Практически все препараты этой группы длительного д-я (30-40 мин):

Тубокурарин

Диплацин

Павулон( Панкурониум)

Диоксоний

Ардуан

!!!Для устранения д-я длительных миорелаксантов вводятПРОЗЕРИН

Недеполяризующие..

Все препараты короткого д-я (7-10 мин):

Дитилин

Листенон

Миорелаксин

Сукцинилхолин

4. Отобрать препараты для внутривенного наркоза.

• виадрил;
• пропанидид;
• оксибутират натрия;
• кетамин.
• тиопентал натрия,
• тиаминал
• гексенал,
• метагекситон
• Деприван (Пропофол),
• Собревин,
• Пропанидид

5. Отобрать препараты для местной анестезии (по способу введения).

Анестезин, Дикаин, Тетракаин, Дикаин, Новокаин, Лидокаин, ТРИМЕКАИН, МЕЗОКАИН, Пиромекаин, Бумекаин, кокаин, Бупивакаин, Маркаин, Анекаин, Ультракаин,

6. Провести сердечно-легочную реанимацию.

Правила проведения сердечно-легочной реанимации.

Поскольку диагноз клинической смерти необходимо установить в кратчайшие сроки, следует экономить каждое движение. Прежде всего, следует проверить наличие сознания. При отсутствии реакции на зов и вопросы о самочувствии, пациента можно слегка встряхнуть за плечи (необходима предельная осторожность в случае подозрения на травму позвоночника). Если ответа на вопросы добиться не удается, надо сильно сжать пальцами ногтевую фалангу пострадавшего. При отсутствии сознания необходимо тут же вызвать квалифицированную медицинскую помощь (лучше это сделать через помощника, не прерывая первичный осмотр). Если пострадавший находится в бессознательном состоянии, и не реагирует на болевое раздражение (стон, гримаса), то это свидетельствует о глубокой коме или клинической смерти. В этом случае необходимо одновременно одной рукой приоткрыть глаз и оценить реакцию зрачков на свет, а другой проверить пульс на сонной артерии. У людей, находящихся в бессознательном состоянии, возможно выраженное замедление сердцебиения, поэтому ожидать пульсовой волны следует не менее 5 секунд. За это время проверяют реакцию зрачков на свет. Для этого слегка приоткрывают глаз, оценивают ширину зрачка, затем закрывают и снова открывают, наблюдая реакцию зрачка. Если есть возможность, то направляют источник света на зрачок и оценивают реакцию. Проверка наличия сердцебиения часто сильно замедляет постановку диагноза, поэтому, если за пять секунд пульсовая волна не обнаружена, то диагноз клинической смерти устанавливается по отсутствию сознания и дыхания. Для регистрации отсутствия дыхания пользуются приемом: "вижу, слышу, ощущаю". Визуально наблюдают отсутствие движения грудной клетки и передней стенки живота, затем наклоняются к лицу пациента и пытаются услышать дыхательные шумы, и ощутить щекой движение воздуха. Выявления таких признаков, как бессознательное состояние, отсутствие дыхания и пульсовой волны на магистральных сосудах – вполне достаточно, чтобы поставить диагноз клинической смерти.

Техника проведения первичной сердечно-легочной реанимации.

РЕЗУЛЬТАТЫ

определения группы исследуемой крови цоликлонами.

Группы исследуемой крови	Цоликлоны анти – А анти - В
0(I)	-	-
А (II)	+	-
В (III)	-	+
АВ (IV)	+	+

3. Определить резус-фактор.

МЕТОД ОПРЕДЕЛЕНИЯ РЕЗУС - ФАКТОРА С ПРИМЕНЕНИЕМ УНИВЕРСАЛЬНОГО РЕАГЕНТА

ü Для этого на дно пробирки необходимо внести 1 каплю стандартного реагента антирезус (универсального реагента) и 1 каплю исследуемой крови (или эритроцитов).

ü Содержимое пробирки перемешать встряхиванием и затем медленно поворачивать, наклонив пробирку почти горизонтально, таким образом, чтобы содержимое растекалось по ее стенкам. Затем в пробирку добавить 2 - 3 мл физиологического раствора хлористого натрия и перемешать, не взбалтывая , путем 2-3 кратного перевертывания пробирки . Через 2 минуты оценку производят визуально. Наличие агглютинации в виде крупных хлопьев из эритроцитов на фоне просветленной жидкости указывает на резус - положительную принадлежность исследуемой крови

ü Отсутствие агглютинации (в пробирке гомогенно окрашенная жидкость) указывает на резус - отрицательную принадлежность исследуемой крови.

4. Показать проведение индивидуальной пробы на совместимость.

ПРОБЫ НА СОВМЕСТИМОСТЬ ПЕРЕЛИВАЕМОЙ КРОВИ

Перед каждым переливанием крови должна проводиться проба на групповую совместимость путем определения (независимо от показателей этикетки) группы крови донора и реципиента по системе АВО.

ü (ИНДИВИДУАЛЬНАЯ ПРОБА НА СОВМЕСТИМОСТЬ) Для этого большая капля сыворотки реципиента смешивается с маленькой каплей (10 : 1) крови донора и наблюдается 5 минут при покачивании тарелки.

При отсутствии агглютинации можно переливать кровь, а при подозрении на агглютинацию кровь не должна переливаться.

ü Экспресс проба на резус - совместимость.

На дно пробирки наносят 2 капли сыворотки больного , 1 каплю донорской крови, 1 каплю 33% раствора полиглюкина. Перемешивают содержимое пробирки встряхиванием в течение 5 минут. Доливают 3 мл физиологического раствора и вновь встряхивают переворачиванием пробирки. Если нет агглютинации - кровь совместима. При наличии агглютинации кровь не совместима, и ее переливать нельзя.

ü ПРОБА НА СОВМЕСТИМОСТЬ ПО РЕЗУС - ФАКТОРУ С ПРИМЕНЕНИЕМ ЖЕЛАТИНЫ является наилучшей, так как дает гораздо меньше ошибок.

Для этого на дно пробирки необходимо поместить одну маленькую капля крови донора , затем накапать две капли подогретого до разжижения 10-% раствора желатины и 2-3 капли сыворотки больного . Содержимое пробирки перемешать путем встряхивания и поместить в водяную баню при температуре 48° 50°С на 10 минут. После этого долить в пробирку 5-8 мл физиологического раствора хлористого натрия, подогретого в той же водяной бане.

Если в пробирке наблюдается агглютинация эритроцитов - кровь донора не совместима с кровью больного и не должна быть ему перелита!

Однако, существование массы других антигенов обусловливает обязательное проведение пробы на биологическую совместимость при каждом переливании крови.

ü Биологическая проба заключается в быстром, струйном переливании 10 мл крови, после чего на 3 минуты прекращается гемотрансфузия. Затем вводится такое же количество крови и выжидается 3 минуты. Наконец, то же повторяют еще третий раз. В итоге больной получает 30 мл крови в течение 9 минут.

При несовместимости ускоряется пульс, дыхание учащается, сначала появляются побледнения кожи лица, сменяющиеся покраснением. У больного возникают боли в груди и в поясничной области. Иногда наблюдается тошнота и рвота. При появлении перечисленных симптомов гемотрансфузия немедленно прекращается. У больных под наркозом при несовместимости переливаемой крови учащается число сердечных сокращений, снижается артериальное давление и усиливается кровотечение из раны.

5. Показать одевание стерильного халата.

(здесь и халат, и перчатки, и маска)

Порядок выполнения:
1. обработанными руками из бикса (крышку открывает помощник) осторожно взять свернутый халат,
2. развернуть его на вытянутых руках, не касаясь соседних предметов и своей одежды,
3. вдеть обе руки в рукава халата и накинуть его на себя спереди,
4. помощник должен подтянуть халат сзади за края и завязать тесемки,
5. самому завязать тесемки на рукавах,
6. достать из кармана пояс на вытянутых руках, помощник темвременем взяв его за концы завязывает их сзади,
7. развернуть маску, держа за середины верхних тесемок, за свободные концы помощник тем временем их должен завязать на затылке,
8. из бикса достать перчатки, развернуть и надеть их,манжетки должны прикрывать рукава халата,
9. руки в стерильных перчатках держать согнутыми в логтевых суставах, приподнятыми вверх на уровне выше пояса (если руки опущены ниже, то они считаются расстерилизованными),
10. в позе ожидания перчатки на руках обернуть стерильной марлевой салфеткой, смоченной в растворе фурациллина1:5000 или 0,5% спиртовым раствором хлоргексидина для защиты их от воздушно-капельной инфекции.

6. Обработка операционного поля по Гроссиху-Филончикова.

7. Обработка операционного поля по Боккалу.

Баккала способ

Баккала способ (истор.; С.А. Баккал, советский хирург) —
1) способ обработки операционного поля, заключающийся в смазывании кожи 1% спиртовым раствором бриллиантовой зелени;
2) способ обработки рук хирурга путем смазывания их баккалином (смесь хинозола с 2% спиртовым раствором бриллиантовой зелени) в течение 2 мин.;
3) способ стерилизации кетгута, заключающийся в его выдерживании в течение 3 суток в 1% спиртовом растворе малахитовой зелени с последующим хранением в спирте.

8. Обработка операционного поля хлоргексидином биглюконатом.