Сборник статей Всероссийской

Министерство сельского хозяйства Российской Федерации

Федеральное государственное бюджетное образовательное

учреждение высшего образования

«ВЯТСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ

СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ»

Факультет ветеринарной медицины

Современные

Научно-

Практические

Достижения

В ветеринарии

Выпуск 8

Киров 2017

Министерство сельского хозяйства Российской Федерации

Федеральное государственное бюджетное образовательное

учреждение высшего образования

«ВЯТСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ

СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ»

Факультет ветеринарной медицины

Современные

Научно-

Практические

Достижения

В ветеринарии

Сборник статей Всероссийской

Научно-практической конференции

Апреля 2017 года

Выпуск 8

Киров 2017

УДК 619:618

ББК 48.761

Современные научно-практические достижения в ветеринарии: Сборник статей Всероссийской научно-практической конференции, 13-14 апреля 2017 года. - Выпуск 8. - Киров: Вятская ГСХА, 2017. – 90 с.

Главный редактор – ректор академии, профессор В.Г. Мохнаткин.

Зам. главного редактора – проректор по научной работе и инновациям,

Профессор И.Г. Конопельцев.

Ответственный за выпуск – декан факультета ветеринарной медицины,

Профессор С.Н. Копылов.

Редакционная коллегия:

доктор ветеринарных наук, профессор А.Б. Панфилов;

доктор ветеринарных наук, профессор В.А.Созинов.

В сборнике представлены материалы исследований, посвященных проблемам инфекционных, паразитарных и незаразных заболеваний, их диагностике, профилактике, лечению, разведению, кормлению и содержанию сельскохозяйственных и диких животных.

Сборник публикуется в авторской редакции.

ã ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, 2017

Содержание

Андреева С.Д. Морфологическая оценка поджелудочной железы при остром деструктивном панкреатите в эксперименте в условиях введения перфторана
Андреева С.Д., Кирилловых А.С.Ультраструктура экзокринной паренхимы поджелудочной железы при остром деструктивном панкреатите
Андреева С.Д., Тимкина П.С. Ультраструктурные и кристаллоскопические изменения печени при экспериментальном остром панкреатите
Бледных Л.В., Николаев С.В., Конопельцев И.Г. Токсикологические свойства озонированного льняного масла
Буров В.В. Сравнительная оценка схем лечения дерматофитозов собак в ВЛЦ «Айболит» города Кирова
Варганов А.И., Балезина Н.С., Поторочина А.А.Пробиотик Биосан и его использование при лечении эндометрита у коров
Ермолина С.А., Созинов В.А. Динамика функциональной устойчивости эритроцитов у телят, больных бронхопневмонией при разных способах лечения
Ермолина С.А., Созинов В.А. Токсикологическая оценка препарата «Альгасол»
Ефремов А.Ю., Трефилов В.Н.Мониторинг вирусных инфекций, проводимых вирусологическим отделом Кировской областной ветеринарной лаборатории
Жданова О.Б., Андреева С.Д., Мартусевич А.К., Окулова И.И.Биокристалломика в диагностике трихинеллеза животных семейства Artiodactyla: возможности и перспективы
Ивановский А.А., Копылов С.Н., Жижина А.А. Влияние фитокомплекса на основе левзеи сафлоровидной и пробиотического микроорганизма на биохимию крови и клиническое состояние поросят-отъемышей
Ивонин А.Г., Пименов Е.В., Оборин В.А., Чернядьев А.В.Морфологическая трансформация эритроцитов собаки при экстракорпоральной обработке цефтриаксоном и последующей инкубации в аутологичной плазме крови
Мутошвили Л.Р., Жданова О.Б., Ашихмин С.П. Изучение активности животных в тестах принудительного плавания и открытого поля при нематодозах
Николаев С.В., Бледных Л.В., Конопельцев И.Г. Антимикробные свойства озонированного льняного масла
Николаев С.В., Конопельцев И.Г., Бледных Л.В. Распространенность и формы гинекологической патологии у коров в сельскохозяйственных предприятиях Кировской области и Республики Коми
Оборин В.А.,Пименов Е.В.,Рылов А.В., Романов В.Е. Проблемы и пути решения профилактики и лечения сибиреязвенной инфекции у людей и сельскохозяйственных животных в России и за рубежом
Панфилов А.Б. Синтопия, параметры и количество мезентериальных лимфатических узлов у мелких хищников
Питиримов А.С., Сапожников А.Ф., Филатов А.В.Качество перепелиных яиц при использовании биодобавки Вэрва
Разницына В.А., Перлецкая О.В., Цывунина Д.А.Клинический случай острого миелоидного лейкоза собаки
Романов В.Е., Подволоцкий А.Н., Позолотина Н.В., Погорельский И.П.Изучение взаимоотношения пробиотических бактерий Lactobacillus Paracasei с представителями кишечной микробиоты лабораторных животных
Романов В.Е., Шевцов А.Н.Настоящее и будущее вакцинопрофилактики сельскохозяйственных животных против сибирской язвы
Скопин А.Е., Конопельцев И.Г.Состояние неспецифической резистентности высокопродуктивных клинически здоровых и больных острым эндометритом коров в послеродовой период
Скорнякова О.О.Опыт применения Чистотел зооспрея и аверсектиновой мази для борьбы с микроклещами морских свинок и мышей
Соболева О.А., Шаромова Н.В.Показатели качества и безопасности яиц куриных производства предприятия ООО «Зуевское любимое»
Толкачёв В.А., Кучерук Д.Л.Анализ породной предрасположенности собак к заболеваниям кожи
Черезова А.В.Биологическая роль мелатонина как адаптогена
Шестакова А.Н., Рябов Д.К.Изменения конечной части желудочкового комплекса на ЭКГ и уровня сердечного тропонина (cTnI) в сыворотке крови у ездовых собак под влиянием физических нагрузок
Сведения об авторах

УДК 599.323.4:616.37-002

Макроскопически головной мозг у животных, как контрольной группы, так и опытной, имел гладкий рельеф и тонкие прозрачные оболочки; вещество мозга на разрезе серовато-белого цвета. Эпикард сердечной мышцы был гладким, блестящим, венечные сосуды наполнены кровью, миокард имел буровато-красную окраску. Легкие также были полнокровны, серовато-розовые на разрезе. Печень имела ровную, гладкую капсулу, на разрезе дольчатое строение паренхимы было сохранено. Селезенка имела гладкую полупрозрачную капсулу, была эластичная, на разрезе темно-вишневого цвета, соотношение красной и белой пульпы было нормальное. Желудок – растянут, полость его заполнена содержимым, слизистая оболочка серовато-розового цвета, рельеф обычный, подлежащие слои стенки желудка без видимых изменений. Поджелудочная железа имела дольчатое строение, на разрезе серовато-желтоватого цвета. В тонком и толстом отделе кишечника слизистая оболочка была сохранена на всем протяжении, подслизистая, мышечная и серозные оболочки стенки кишки имели обычный вид, с умеренно наполненными кровью сосудами. Почки имели ровную, гладкую капсулу, на разрезе строение паренхимы было сохранено, клубочки коркового слоя хорошо сохранены, строма без изменений, с умеренно полнокровными сосудами.

Выводы:

1. Согласно классификации ГОСТ 12.1.007-76 препарат «Альгасол» относится к четвертому классу токсичности – малотоксичный.

2. Препарат «Альгасол» кумулятивными свойствами не обладает.

Длительное воздействие препарата «Альгасол» на организм опытных животных оказывает положительное действие, что способствует достоверному увеличению массы тела и достоверному увеличению абсолютной массы всех внутренних органов, не изменяя макроструктуру этих органов.

Литература

1. Антонов, Б.И. Лабораторные исследования в ветеринарии: химикотоксикологические методы: Справочник / Под ред. Б.И. Антонова и др. - М.: Агропромиздат, 1989. - 320 с.

2. Войнар, А.И. Биологическая роль микроэлементов в организме животных и человека. - М., 1960. - 544 с.

3. Руководство по экспериментальному (доклиническому) изучению новых фармакологических веществ / Под ред. Р.У. Хабриева. – 2-изд. – М.: Медицина, 2005. – 832 с.

УДК 19:616.032:615.371

ВЕТЕРИНАРНОЙ ЛАБОРАТОРИИ

Ефремов А.Ю., Трефилов В.Н.

КОГБУ «Кировская областная ветеринарная лаборатория, г. Киров, Россия

Характеристика основных методов диагностики (ИФА, ПЦР, ПЦР в реальном времени). Для ПЦР характерно: возможность выявления возбудителя в различных образцах на чувствительность, специфичность. В процессе исследования патматериала предоставляется возможность дифференциальной видовой диагностики, а также определить маскированный возбудитель или несколько возбудителей в пробе.

Модификация ПЦР в реальном времени добавляет существенное повышение специфичности метода за счёт наличия внутреннего специфического зонда, возможностью количественного определения инфекционного агента, снижает риск контаминации и время проведения реакции.

ИФА используется для обнаружения антигенов и выявления антител, что очень важно для ранней диагностики вирусных болезней, этиологического анализа эпизоотии. Реакция является незаменимым инструментом для эпизоотологического мониторинга инфекций и проведения ретроспективной диагностики болезней животных в результате применения в хозяйствах вакцин, позволяет контролировать механизм формирования иммунитета.

Принцип использования тест–систем для выявления возбудителей и специфических антител при инфекционных вирусных болезнях животных:

1. Метод обнаружения ДНК вируса инфекционного ринотрахеита – пустулёзного вульвовагинита (ИРТ-ИПВ) КРС основан на экстракции ДНК из биологического материала совместно с ДНК экзогенного неконкурентного внутреннего контрольного образца (ВКО), проведения амплификации полученной ДНК и последующей гибридизационно – флуоресцентной детекцией продуктов амплификации в режиме «реального времени» на амплификаторе для русско-язычной версии программы Rotor Gene 6000.

2. Тест–система «ВД» (test – system «VD») для выявления возбудителя вирусной диареи (ВД) КРС методом ПЦР выпускается в формате FRT с гибридизационно – флуоресцентной детекцией в режиме «реального времени». В основе метода (ОТ – ПЦР) лежит получение кДНК специфического участка вируса диареи КРС методом обратной транскрипции РНК и её амплификации за счёт многократного повторения циклов денатурации кДНК в исследуемой пробе, отжига праймеров и зондов, меченых флуоресцентными красителями, и синтеза комплементарных цепей ДНК с помощью Tag – полимеразы.

3. Метод конкурентного иммуноферментного анализа для определения антител к гликопротеину Gb на примере вируса ИРТ – ИПВ КРС в сыворотке крови заключается в блокировании антителами к вирусу, сенсибилизированных на поверхности лунок полистиролового планшета, с анти –gB моноклональными антителами, ковалентно связанными с ферментом – пероксидазой хрена, который при взаимодействии с субстратом (Н²О²) в составе бесцветной хромогенной смеси вызывает её окрашивание.

Снижение интенсивности окрашивания пропорционально концентрации специфических антител в исследуемых образцах.

Данная методика позволяет проводить:

- серологический контроль за распространением ИРТ/ИПВ в популяциях крупного рогатого скота;

- оценку эффективности иммунизации поголовья против данного заболевания;

- ретроспективную диагностику ИРТ/ИПВ в популяциях КРС по приросту уровня специфических антител.

4. ИФА - тест на антитела к вирусу африканской чумы свиней (АЧС). Методика выявления антител основывается на непрямом твёрдофазном иммуноферментном анализе (непрямая ИФА). Образцы подвергаются действию в лунках, покрытых неинфекционным антигеном ВАЧС, на микротитровальных планшетах.

Антитела ВАЧС (если они присутствуют в опытном образце) связываются с антигенами в лунке. Конъюгат пероксидазы хрена, добавленный впоследствии, образует комплекс с этими антителами. Несвязанный материал удаляется путём промывки перед добавлением раствора субстрата. Впоследствии вырабатывается синий цвет, что происходит за счёт конверсии субстрата конъюгатом. Положительный результат указывается выработкой цвета. Реакция останавливается добавлением стоп-раствора, цвет изменяется на жёлтый. Результат считывается фотометром для микропланшетов, при оптической плотности 450 нм.

5. Иммуноферментный анализ бешенства заключается в специфическом взаимодействии антигена с антителами, иммобилизированным на твёрдом носителе. Связанный антиген выявляется с помощью второго меченого ферментом антитела. Уровень меченых антител в этой реакции прямопропорционален количеству антигена.

Учёт ИФА проводят на сканирующем спектрофотометре при длине волны 492 нм. При спектрофотометрическом учёте результата ИФА производят расчёт коеффициента специфичности, который равен отношению оптической плотности (ОП) продукта реакции в лунках с контрольным положительным антигеном или исследуемым материалом (ОП¹) к оптической плотности субстратной смеси в лунках с контрольным отрицательным антигеном (ОП²).

Реакцию считают положительной, если коэффициент специфичности не ниже 2,1, и отрицательной, если ниже 2,1.

Таблица 1 - Данные о проведенных исследованиях методом ПЦР, ИФА, РТГА, РНИФ с 01.01.2015 по 29.12.2016 гг.

Наименование болезни	Вид животных	Вид материала	Количество проб	Количество положительных результатов
2015 г.	2016 г.	2015 г.	2016 г.

Тест-система «ХЛА-КОМ»
Хламидиоз	КРС	аборт.плоды
сперма
патматериал
влагалищная слизь
соскобы слизистых
мертворожденные
Свиньи	аборт.плоды
сперма
Собаки	патматериал
смывы и соскобы со слизистых
Кошки	смывы и соскобы со слизистых
Всего:
Тест-система «Набор для выявлеления ДНК патогенных лептоспир методом ПЦР»
Лептоспироз	КРС	аборт.плоды
мертворожденные
патматериал
Свиньи	аборт.плоды
Всего:

Продолжение таблицы 1


Тест-система «АБН»
Алеутская болезнь норок	Норки	фекалии
Всего:
Тест-система «МТБ-КОМ»
Туберкулез	КРС	патматериал
Свиньи	патматериал
Всего:
Тест-система «Для выявления генома вируса ВГБК методом ОТ-ПЦР в режиме реального времени»
Вирусная гемморагическая болезнь кроликов	Кролики	патматериал
Всего:
Тест-система «ХЛА-ПСИТ»
Орнитоз	Попугаи	помет
Декоративная птица	помет
Голуби	помет
ЦБ	патматериал
Совы	помет
Страус	помет
Амадины	помет
Канарейки	патматериал
помет
Лебедь	патматериал
Куры	патматериал
помет
Индюки	патматериал
Цесарка	помет
Утка	помет
Павлин	помет
Ворон	помёт
Синицы	патматериал
Всего:
Тест-система «МИК-КОМ», «МИК-ДИФ»
Микоплазмоз	КРС	патматериал

стабилизированная кровь
сперма
экссудат из сустава
смывы и соскобы со слизистых оболочек
Свиньи	стабилизированная кровь
патматериал
Птица	смывы со слизистых оболочек
патматериал

Продолжение таблицы 1


	Муфлон	патматериал
Кошки	смывы со слизистых
Всего:
Тест-система «ПВС»
Парвовирусная болезнь свиней	Свиньи	аборт. плод
мертворожденные
патматериал
Всего:
Тест-система «Аденовир»
Аденовирус плотоядных	Собаки	смывы со слизистых оболочек
Всего:
Тест-система «Набор для диагностики парагриппа-3 КРС»
Парагрипп-3	КРС	Сыворотки крови КРС племенных хозяйств			вакцинация	вакцинация
Сыворотки крови КРС товарных хозяйств			частичная вакцинация	вакцинация
Всего:					Иммунитет
Тест-система «Ринокор» Конкурентный иммуноферментный анализ «ZETECT-Серелиза-ИРТ/ИПВ-Ат-gB»
Ринотрахеит крупного рогатого скота	КРС	патматериал
аборт. плод
смывы со слизистых оболочек
сперма
мертворожденные
сыворотки крови КРС племенных хозяйств			вакцинация	вакцинация
сыворотки крови КРС товарных хозяйств			частичная вакцинация	вакцинация
Всего:
Тест-система «Поличум»
Чума плотоядных	собаки	смывы со слизистых оболочек
фекалии
кровь
Всего:
Тест-система «Для выявления генома вируса миксомы кроликов»
Миксоматоз кроликов	Кролики	патматериал
Всего:
Тест-система «Коронавир»
Коронавирусная инфекция	Собаки	кровь
фекалии
Всего:

Продолжение таблицы 1


Тест-система «Парвовир»
Парвовирусный энтерит плотоядных	Кошки	фекалии
смывы со слизистых оболочек
Собаки	фекалии
смывы со слизистых оболочек
Всего:
Тест-система «ГРИПП»
Грипп птиц	Куры	патматериал
помет
Беркут	помет
Попугаи	помет
ЦБ	помет
Дикие утки	материал
Индюки	помет
Синантропная птица	патматериал
помет
С/х птица	помет
Гуси домашние	помет
патматериал
Домашняя птица	помет

Всего:
Тест-система «АЧС», «Набор для выявления ДНК вируса АЧС методом ПЦР с электрофоретической детекцией, в полной комплектации»
Африканская чума свиней	Свиньи	патматериал
Кабаны	материал
Пищевые продукты	мясо, шпик, мясные полуфабрикаты
Всего:
Тест-система «КЧС»
Классическая чума свиней	Свиньи	патматериал
Всего:
Тест-система «РРСС»
Репродуктивно респираторный синдром свиней	Свиньи	патматериал
мертворожденные
аборт.плоды
Всего:
Тест-система «ТГЭС»
Трансмиссивный гастроэнтерит свиней	Свиньи	патматериал
содержимое кишечника
фекалии
Всего:

Продолжение таблицы 1


Тест-система «ВД», «Иммуноферментный метод «ВДКРС-СЕРОТЕСТ»
Вирусная диарея крупного рогатого скота	КРС	фекалии
абортплоды
смывы со слизистых оболочек
мертворожденные
патматериал
Сыворотки крови КРС пленных хозяйств			вакцинация	вакцинация
Сыворотка крови КРС товарных хозяйств			частичная вакцинация	вакцинация
Всего:
Тест-система «РОТАВИР»
Ротавирусная инфекция	КРС	патматериал
фекалии
Собаки	материал
Овцы	патматериал
Свиньи	патматериал
фекалии
содержимое тонкого отдела кишечника
Лань	патматериал
Всего:
Тест-система «РИНОВИР»
Ринотрахеит кошек	Кошки	Смыв со слизистых оболочек
Всего:
Тест-система «Для иммуноферментного анализа РПИФ»
Бешенство	Лисы	Головной мозг
Еноты
Барсуки
Кошки
Собаки
Волки
Барсуки
КРС
МРС
Свиньи
др. виды

Всего:
Всего:
Тест-система «РСИ-СЕРОТЕСТ»
РСИ		Сыворотка крови КРС племенных хозяйств			вакцинация	вакцинация
Сыворотка крови КРС товарных хозяйств			частичная вакцинация	вакцинация
Всего:
Итого:

Удк 616:619

К ЗАБОЛЕВАНИЯМ КОЖИ

Толкачёв В.А., Кучерук Д.Л.

ФГБОУ ВО Курская ГСХА, г. Курск, Россия

С ростом количества собак, содержащихся в квартирах, домах, личном подворье учащаются случаи диагностирования ветеринарными специалистами, оказывающими услуги по диагностике, лечению и профилактике болезней, патологий инфекционной и неинфекционной этиологии. Из числа последних широкое распространение имеют дерматопатологии полиэтиологического характера [1].

Влияние породного фактора на инцидентность кожных болезней [2], выражается в специфике проявления дерматофитоза у йоркширских терьеров, тяжелой формы атопического дерматита у вест-хайленд-уайт-терьеров и французских бульдогов, генерализованного демодекоза у мопсов и доберман-пинчеров, мастоцитомы у шарпеев. Определенную генетическую предрасположенность к дерматозам регистрировали у высокоинбридных пометов ретриверов [3].

В связи с этим целью работы явилось осуществить анализ породной предрасположенностисобак к заболеваниям кожи.

Работу выполняли на кафедре хирургии и анатомии ФГБОУ ВО Курской ГСХА. Анализ породной динамики регистрации заболеваний кожи у собак позволил установить, что кожной патологии более подвержены чистопородные собаки – 56,92, чем беспородные – 43,08%. Детализация породной предрасположенности свидетельствует, что дерматологические заболевания чаще всего диагностируются у представителей крупных пород, таких как немецкая овчарка – 10,77 и боксер – 10,00, а также мелких – пекинес – 10,77%; у пород средних размеров: шарпей – 6,15, такса – 7,69, французский бульдог – 7,69%. Самый низкий показатель зарегистрирован у чихуа-хуа – 3,85%.

В видовой структуре кожных патологий с учетом породы животного установили, что у собак породы немецкая овчарка наибольшее распространение имели ограниченные гнойные воспалительные процессы (абсцессы), у бульдогов – нарушение целостности кожных покровов травматического характера, у всех остальных пород (боксер, такса, шарпей, пекинес, чихуа-хуа) – экзематозные поражения. У беспородных представителей в видовой структуре кожных заболеваний была выявлена следующая тенденция: экземы – 25%, дерматиты – 20%, травматические нарушения целостности кожных покровов – 18%, нарушения пигментации кожи – 16%, абсцессы – 11%, фолликулиты – 9%, опухоли – 2%. Однако при детальном изучении установили, что у собак породы боксер на фоне экзем возникали опухоли и нарушение пигментации отдельных участков кожного покрова; у шарпеев и пекинесов только на фоне последнего; у французских бульдогов – на фоне ранений, вызванных действием механических травмирующих факторов; у такс на фоне возникновения и развития воспалительных процессов в коже (дерматитов) различной этиологии; у чихуа-хуа на фоне онкопатологических процессов (доброкачественных и злокачественных рецидивирующих опухолей) в эпидермисе.

Анализ породной динамики частоты регистрации болезней кожи у собак позволил выяснить, что дерматопатологии подвержены чистопородные собаки таких пород, как немецкая овчарка, боксер, пекинес, шарпей, такса, французский бульдог, чихуа-хуа.

Литература

1. Мельник, Т.В. Особенности экзематозного процесса у собак разных пород: Автореф. дис. … канд.вет.наук / Т.В. Мельник. – СПб., 2002. – 20с.

2. Хелен, Пауэр, Паскаль, Прело Влияние породы на течение кожных болезней у собак/ Хелен Пауэр, Паскаль Прело. – VeterinaryFocus, 2011. - № 21.3. - С. 10-17.

3. Linder, K.E., Olivry, T.O., Bernstein, J.A., et al. Novel congenital acantholytic blistering dermatosis in Chesapeake Bay retrievers, in Proceedings. NorthAmerVetDermatolForum. - Savannah, 2009. - 219 р.

УДК 636:611.4

СВЕДЕНИЯ ОБ АВТОРАХ

Андреева Светлана Дмитриевна ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, доцент кафедры диагностки, терапии, морфологии и фармакологии, кандидат ветеринарных наук 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский проспект, 133, тел. (8332) 57-43-29, [email protected]

Ашихмин Сергей Петрович ФГБОУ ВО Кировский ГМУ Министерства здравоохранения РФ, проректор по медицинской деятельности, кандидат медицинских наук, доцент 610000, Россия, г. Киров, ул. К.Маркса, 112, [email protected]

Балезина Наталья Сергеевна ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, старший лаборант кафедры хирургии, акушерства и заразных болезней 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский проспект, 133, тел. (8332) 57-43-76

Бледных Лариса Валентиновна ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, доцент кафедры диагностки, терапии, морфологии и фармакологии, кандидат ветеринарных наук 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский проспект, 133, тел. (8332) 57-43-62

Буров Вадим Валерьевич ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, доцент кафедры хирургии, акушерства и заразных болезней, кандидат ветеринарных наук 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский проспект, 133, тел. (8332) 50-61-33

Варганов Александр Иванович ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, заслуженный деятель науки РФ, член-корреспондент РАЕ, профессор кафедры хирургии, акушерства и заразных болезней, доктор ветеринарных наук 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский проспект, 133, тел. (8332) 50-61-33

Ермолина Светлана Александровна ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, заведующий кафедрой зоогигиены, физиологии и биохимии, доктор ветеринарных наук, доцент 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский проспект, 133, тел. (8332) 57-43-47, [email protected]

Ефремов Алексей Юрьевич КОГКУ «Кировская областная ветеринарная лаборатория», директор 610006, Россия, г. Киров, ул. Северное Кольцо, 9А, kirovoblvetlab@mail. ru

Жданова Ольга Борисовна ФГБОУ ВО Кировский ГМУ Министерства здравоохранения РФ, зав.кафедрой гистологии, эмбриологии и цитологии, доктор биологических наук, доцент 610000, Россия, г. Киров, ул. К.Маркса, 112

Жижина Анна Александровна ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, аспирант кафедры диагностики, терапии, морфологии и фармакологии 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский проспект, 133

Ивановский Александр Александрович ФГБНУ НИИСХ Северо-Востока, зав. лабораторией ветбиотехнологии 610007, Россия, г. Киров, ул. Ленина, д.166а, [email protected] ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, профессор кафедры диагностики, терапии, морфологии и фармакологии, доктор ветеринарных наук 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский проспект, 133

Ивонин Алексей Геннадьевич Коми НЦ УрО РАН, отдел сравнительной кардиологии, научный сотрудник, кандидат биологических наук 167982, Росия, Республика Коми, г. Сыктывкар, ул. Коммунистическая, 24 ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, доцент кафедры хирургии, акушерства и заразных болезней 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский пр-т, 133, тел. (8332) 57-43-76

Кирилловых Анна Сергеевна ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, асситент кафедры диагностки, терапии, морфологии и фармакологии 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский проспект, 133, тел. (8332) 57-43-29

Конопельцев Игорь Геннадьевич ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, проректор по научной работе и инновациям, профессор кафедры хирургии, акушерства и заразных болезней, доктор ветеринарных наук 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский проспект, 133, тел. (8332) 57-43-04

Копылов Сергей Николаевич ФГБОУ ВО Вятская ГСХА, декан факультета ветеринарной медицины, профессор кафедры диагностики, терапии, морфологии и фармакологии, кандидат ветеринарных наук 610017, Россия, г. Киров, Октябрьский проспект, 133, тел. (8332) 57-43-09

Кучерук Дарья Леонидовна ФГБОУ ВО Курская ГСХА, студентка 4-го курса факультета ветеринарной медицины 305021, Россия, г. Курск, ул. Карла Маркса, 70

Мартусевич Алексей Константинович ФГБОУ ВО Кировский ГМУ Министерства здравоохранения РФ 610000, Россия, г. Киров, ул. Карла Маркса, 112

Мутошвили Лиа Решитовна ФГБОУ ВО <