Правила работы с микроскопом
Изучение любого гистологического препарата необходимо начинать со слабого увеличения, при котором нужно рассмотреть весь срез, ориентироваться в том, что можно увидеть на препарате и выбрать наиболее типичные и удобные для дальнейшего детального изучения места. На любом микропрепарате обычно бывают такие участки, где интересующие детали выявлены лучше, яснее; часто это зависит от плоскости разреза (поперечные или продольные), а иногда и от качества обработки препарата, не всегда одинаковой на всем протяжении среза (особенно на препаратах, импрегнированных серебром). В слоистых органах важно найти место с хорошим вертикальным разрезом, так как только на таком разрезе слои будут видны с полной ясностью. Поэтому студент не должен спешить переходить к сильному увеличению, не рассмотрев детально препарата при слабом увеличении.
Перед работой надо проверить револьвер микроскопа [он должен быть замкнут на засечку слабого (8х) объектива] и зеркало (при обычном источнике освещения взять вогнутое зеркало). Затем необходимо последовательно проделать следующее.
1. Поставить микроскоп в удобное для наблюдения положение у края стола, чтобы не приходилось к нему тянуться; при штативах с вертикальным тубусом надо нагнуть микроскоп, чтобы окуляр оказался на уровне глаза наблюдателя.
2. Установить освещение при слабом объективе; для этого надо повернуть зеркало в такое положение, чтобы все поле зрения микроскопа было освещено равномерно и достаточно интенсивно.
3. Положить препарат на предметный столик микроскопа так, чтобы объект приходился над отверстием столика. При этом надо обязательно проверить положение препарата покровным стеклом вверх.
4. Движением кремальеры найти фокус слабого увеличения, при котором препарат ясно будет виден в поле зрения (свободное расстояние между стеклом препарата и фронтальной линзой объектива при этом будет около 1 см(точнее 8,5 мм).
5. Рассмотреть препарат при слабом увеличении. Сориентировавшись в препарате, найти место, подходящее для изучения при сильном увеличении, поставить его в центр поля зрения (передвигая препарат по столику рукой.
6. Не меняя положения тубуса, повернуть плавным движением револьвер на сильный (40х) объектив, проследив за замыканием засечки револьвера.
7. Контролируя глазом сбоку, опустить тубус примерно до расстояния 0,5-1 ммот стекла. Затем, глядя в окуляр, осторожным движением кремальеры найти нужный фокус и микровинтом отфокусировать объект. При объективе 40 свободное расстояние будет меньше половины миллиметра (точнее 0,40 мм), поэтому легко неосторожным движением раздавить препарат и повредить объектив. Это необходимо помнить, переходя (особенно на первых порах) к сильному увеличению.
8. Изучить препарат при сильном увеличении.
Очень важно с первого же занятия приучиться к двум основным правилам микроскопирования. Во-первых, при сильном увеличении необходимо непрерывно пользоваться микрометрическим винтом, слегка вращая его в обе стороны. Это нужно потому, что микровинт служит не только для установления точной фокусировки. Ведь как бы ни был тонок рассматриваемый объект, он имеет толщину, и различные структурные детали объекта занимают различные уровни в пределах его толщи. Поэтому, чтобы ясно проследить и увидеть детали структуры, необходимо все время менять фокус, устанавливая его на различные уровни толщи препарата. Для этого необходимо, чтобы левая рука в продолжение всего времени микроскопирования находилась на барашке микрометрического винта и слегка его поворачивала в обе стороны. Только тогда можно разобраться в структуре препарата и по-настоящему увидеть его тонкое строение. Этот прием необходимо выработать с самого начала работы с микроскопом.
Другое важное правило относится к микроскопированию обоими глазами. Начинающие стараются зажмурить один глаз, который, как им кажется, «мешает». В действительности закрывание одного глаза вредно, так как глазные мышцы в обоих глазах работают координированно, и закрывание одного глаза напрягает мышцы того глаза, которым ведется наблюдение. В результате создается ненужное утомление. Поэтому надо с первого же занятия приучить себя, смотря в окуляр одним глазом (удобнее левым), не закрывать другого глаза. На первых порах он будет «мешать», и наблюдатель будет им видеть стол, тетрадь и т. д. Но стоит сделать над собой небольшое усилие и отвлечься от того, что видит этот глаз, сосредоточившись на препарате, как свободный глаз перестает мешать, наблюдатель перестает видеть посторонние предметы, и наблюдение ведется спокойно, без утомления.
После окончания изучения микропрепарата следует поднять тубус, перевести револьвер на слабое увеличение и только тогда снять препарат с микроскопа. Нельзя вытаскивать препарат из-под сильного объектива, этим можно повредить препарат и безнадежно испортить объектив.
3. Методика приготовления гистологических препаратов (микротехника)
Основными методами изучения биологических микрообъектов являются световая и электронная микроскопия, которые широко используются в экспериментальной и клинической практике. Основными объектами исследования являются гистологические препараты, приготовленные из органов лабораторных животных (крыс, собак, кроликов и т.д.), реже из объектов, взятых во время оперативного вмешательства или от трупов людей.
Изготовление гистологических препаратов складывается из следующих основных этапов:
1. Взятие и фиксация биологических объектов;
2. Промывка, обезвоживание и заливка биологических объектов;
3. Приготовление срезов;
4. Окрашивание и заключение срезов.
1 - взятие и фиксация биологических объектов. Главное требование: максимальное сокращение сроков взятия материала, минимальное травмирование тканей и создание оптимальных условий для фиксации. Для умерщвления лабораторных животных применяется наркоз, декапитация, электрический ток и т.д. Затем следует быстрое вскрытие животного, извлечение необходимых органов и тканей, из которых острым инструментом вырезают небольшие кусочки (5-10 мм3) и помещают их в фиксатор. Объем фиксатора должен превышать объем фиксируемого объекта в 20-40 раз. Фиксация предупреждает развитие посмертных изменений в тканях, прекращая в них биохимические процессы. В основе действия любого фиксатора лежат сложные физико-химические процессы, в первую очередь, коагуляция (свертывание) белков. В гистологической практике применяют различные фиксаторы: простые, содержащие один компонент (формалин, спирт, ацетон) и сложные, содержащие два и более компонентов (жидкость Карнуа: абсолютный спирт, хлороформ, ледяная уксусная кислота; жидкость Ценкера: двухромовокислый калий, сернокислый натрий, сулема, формалин, дистиллированная вода).
2 - промывание, обезвоживание и заливка биологических объектов.Для получения тонких срезов зафиксированные биологические объекты необходимо подготовить соответствующим образом: сделать его достаточно плотным, но не хрупким. После фиксации кусочки промывают под проточной водой в течение 12-24 часов для освобождения от излишков фиксатора. Для объектов, фиксированных в спирте или жидкости Карнуа, этот этап пропускают. После промывания объекты необходимо обезводить и уплотнить в спиртах возрастающей крепости, для чего последовательно используют 50, 60, 70, 90, 96 и 100о спирт. Далее кусочки просветляют, для чего их помещают сначала в смесь абсолютного спирта (100о) и О-ксилола (1:1), затем в две-три порции чистого О-ксилола. После просветления материал готов к пропитыванию в парафинах. Для этого объекты помещают в термостат сначала в кашицу (смесь равных частей О-ксилола и парафина) при температуре 37оС, а затем в две-три порции чистого парафина, расплавленного при температуре 56оС. Пропитанные парафином кусочки наклеивают на деревянные блоки. Подготовленные таким образом биологические объекты могут длительное время храниться на открытом воздухе.
Для обработки твердых тканей (кости, зубы) сразу же после фиксации и промывки материала используют методику декальцинации при помощи 5-7% раствора азотной кислоты. По мере вымывания солей кальция под действием кислоты, твердые ткани становятся мягкими, при этом их гистологическая структура сохраняется за счет оставшихся органических веществ. После декальцинации необходимо повторно промыть кусочки под проточной водой, затем обезводить, просветлить и залить в парафин.
3 - приготовление гистологических срезов. Для приготовления срезов используют специальные приборы – микротомы. Их три типа: санный, ротационный и замораживающий. Санный микротом позволяет получать ступенчатые срезы, ротационный – серийные, замораживающий дает возможность получать срезы фиксированного и нефиксированного биологического материала без предварительной заливки в парафин. Все микротомы снабжены механизмом подачи микрообъекта и специальным микротомным ножом.
Полученные парафиновые срезы наклеивают на предметное стекло, смазанное смесью белка с глицерином (1:1) и подсушивают на воздухе, либо в термостате при 37оС. Срезы, приготовленные на замораживающем микротоме помещают в чашку с дистиллированной водой, после чего сразу же окрашивают.
4 - окрашивание и заключение срезов.Окрашивание срезов применяется для того, чтобы отчетливо видеть под микроскопом строение органа, и основано на неодинаковом химическом составе тканевых структур. Для окрашивания применяется большое количество красителей. Все их можно разделить по происхождению: растительные (гематоксилин), животные (кармин), синтетические (эозин и др.); а также по химическим свойствам: кислые, основные, нейтральные.
Способность структур окрашиваться основными красителями называется базофилией. В клетке базофильной структурой является ядро, содержащее нуклеиновые кислоты. К базофильным красителям относятся гематоксилин, кармин, тионин. Структуры, окрашивающиеся кислыми красителями, называются оксифильными, например, цитоплазма клеток. Кислыми красителями являются производные кислот или их соли (эозин, кислый фуксин). Нейтральные красители (трипановая синь, нейтральный красный).
Существуют, кроме того, специфические красители. Например, эластические волокна окрашиваются орсеином в красно-коричневый цвет, резорцин-фуксином – в темно-синий, альдегид-фуксином – в темно-пурпурный. Жиры и жирорастворимые вещества в клетках окрашиваются суданом III в оранжевый цвет, осмий же окрашивает жиры в черный цвет. Для выявления элементов нервной системы применяется метод импрегнации азотнокислым серебром.
Перед любым окрашиванием со срезов удаляют парафин, этот процесс называется депарафинизация. Для этого срезы последовательно проводят через три порции О-ксилола, спирты нисходящей крепости (от 100о до 70о), затем помещают в дистиллированную воду. Замороженные срезы не требуют депарафинизации.
Подготовленные таким образом срезы могут быть окрашены практически любым красителем. Наиболее часто применяется окраска гематоксилином и эозином. Для чего срезы помещают в раствор гематоксилина на 3-5 мин, затем в водопроводную воду – для промывания и дифференцировки. После приобретения ядрами клеток фиолетового цвета (контролируется под микроскопом), производят окрашивание в растворе эозина в течение 0,5-1,5 мин, промывают в дистиллированной воде и обезвоживают в спиртах восходящей крепости (от 70о до 100о). Далее, для удаления спирта и просветления срезов помещают последовательно в три порции О-ксилола и заключают в канадский бальзам.
В некоторых случаях препарат по условиям обработки не может соприкасаться со спиртами, О-ксилолом (например, при окраске на жир), что вызывает необходимость заключать в среды, смешивающиеся с водой: глицерин, глицерин-желатина и др.