Правила работы на кафедре микробиологии

Работа на кафедре микробиологии и в бактериологической лаборатории требует строгого соблюдения специальных правил, так как исследования проводятся с использованием культур условно-патогенных микроорганизмов и материала от больных иэкспериментальных животных.

Соблюдение этих правил необходимо для обеспечения не только личной безопасности, но и безопасности окружающих.

Запрещается

1. Работать в учебных лабораториях без халатов.

2. Входить в учебные лаборатории в головных уборах и верхней одежде.

3. Курить и принимать пищу в учебных лабораториях кафедры.

4. Класть на столы или пол в учебных лабораториях портфели, рюкзаки, сумки и пакеты.

Перед началом работы студент обязан:

1. Надеть медицинский халат, аккуратно застегнув его на все пуговицы.

2. Портфели, сумки, пакеты, книги и другие личные вещи положить в предназначенный для личных вещей студентов шкаф.

3. Проверить состояние рабочего стола и микроскопа. О всех обнаруженных недочетах немедленно сообщить своему преподавателю (Рабочий стол и микроскоп закрепляют за студентом на все время его работы на кафедре).

Обязанности студентов и дежурных во время лабораторной работы:

(На каждое занятие назначают 1-2 дежурных из состава группы)

Дежурные принимают учебный материал от преподавателя и раздают его студентам.

Во время лабораторной работы необходимо:

– содержать рабочее место в образцовом порядке и чистоте;

– бережно обращаться с микроскопом, посудой, инструментами и другими предметами лабораторного оборудования;

– проявлять максимальное внимание ко всем этапам работы с культурами микроорганизмов;

– в случае загрязнения заразным материалом поверхности стола и других предметов, кожи рук и лица также немедленно сообщить о случившемся преподавателю.

Обязанности студентов и дежурных по окончании работы:

1. Привести в порядок рабочее место.

2. Все использованные предметные стекла положить в указанное преподавателем место.

3. Все засеянные пробирки и чашки сдать дежурному для помещения в термостат.

4. Отработанный материал также сдать дежурному для стерилизации.

5. Привести в порядок микроскоп. После проверки преподавателем состояния микроскопа поставить его в шкаф.

6. Обработать руки дезинфицирующим раствором и тщательно вымыть их с мылом.

7. Дежурному вменяется в обязанность проверить состояние рабочих столов и устранить дефекты уборки; выключить свет.

Самостоятельная работа студентов на лабораторных занятиях:

1. Засев патологического материала на питательные среды.

2. Изучение выросших колоний.

3. Приготовление мазков.

4. Фиксация препаратов.

5. Окрашивание препаратов.

6. Микроскопическое исследование препаратов.

7. Зарисовка просмотренных препаратов.

8. Просмотр демонстрационных материалов, оформление и подпись протокола занятия.

9. Уборка рабочего места.

10. По окончании лабораторной работы вымойте руки с мылом и при необходимости обработайте дезинфицирующим раствором.

Методические указания:

Микроскопирование

Перед началом работы проверьте исправность микроскопа и чистоту оптики.

1. Тубус 2. Конденсор 3. Объективы 4. Макровинт 5. Предметный столик микроскопа 6. Окуляр

1. Поднимите до упора конденсор, поднимите тубус.

2. Установите объектив малого увеличения (8х).

3. Вращая зеркало, отрегулируйте освещение так, чтобы все поле зрения было освещено равномерно и ярко.

4. На приготовленный и окрашенный мазок нанесите небольшую каплю иммерсионного масла.

5. Поместите препарат на предметный столик микроскопа.

6. Окрашенные препараты рассматривают только с иммерсионным объективом (ОИ 100х). Поворачивая револьвер, установите объектив ОИ 100х (объектив с большим увеличением).

7. Осторожно опустите объектив с помощью макровинта до соприкосновения с маслом.

8. Наблюдая в окуляр, проведите грубую фокусировку макровинтом.

9. Окончательную фокусировку произведите с помощью микровинта (вращение микровинта допускается в пределах одного оборота).

10. Во время микроскопирования правой рукой производите вращение микровинта, левой – передвижение препарата.

Примечание:

В тубус микроскопа сверху вставлен окуляр, а в нижней части он снабжен вращающимся по кругу револьвером, в отверстия которого ввинчиваются объективы. Вращая револьвер, можно подвести любой объектив, который после легкого щелчка закрепится на месте.

Окуляры имеют две линзы (верхнюю и нижнюю). Расстояние между линзами равно полусумме их фокусных расстояний. С уменьшением фокусного расстояния повышается увеличение окуляра. Короткие окуляры будут более сильными, а более слабыми – длинные. Окуляры обозначают по тому увеличению, которые они дают (5х, 7х, 10х, 12х, 15х).

Объективы подразделяются на сухие и иммерсионные. Сухим называют такой объектив, между линзой которого и рассматриваемым препаратом находится воздух. В микробиологии используется иммерсионный объектив (погруженный в масло - кедровое или касторовое, укропное, вазелиновое или др.). Между линзой и рассматриваемым препаратом находится масло (однородная среда). Получается система: стекло препарата – иммерсионное масло – стекло объектива (с одинаковым показателем преломления). Благодаря маслу все лучи, не преломляясь и не изменяя направления, попадают в объектив, чем улучшают изображение микробов, делают его более четким. На оправе объектива обозначается даваемое им увеличение (8х, 10х, 20х, 40х, 100х).

Общее увеличение микроскопа равняется произведению увеличения объектива на увеличение окуляра. Например, иммерсионный объектив с увеличением х100 и окуляром 10х дает увеличение объекта в 1000 раз.

Конденсор состоит из системы линз, предназначенных для собирания лучей, идущих от зеркала, в одной точке – фокусе, который должен находиться в плоскости рассматриваемого препарата. При микроскопировании с дневным светом конденсор должен быть поднят до уровня предметного столика. При изучении неокрашенных объектов следует опускать конденсор.

Бинокулярный микроскоп имеет два тубуса с окулярами. При наблюдении объекта обоими глазами одновременно достигается большая резкость глубины, меньше утомляется зрение.