Культивирование одноклеточных водорослей
Лабораторная работа № 7
БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ РАЗВЕДЕНИЯ ЖИВЫХ КОРМОВ В ИНДУСТРИАЛЬНОЙ АКВАКУЛЬТУРЕ
Цель работы: изучить методы разведения живых кормов в индустриальной аквакультуре.
Материал и оборудование: фотографии, слайды, плакаты, макеты.
ЗАДАНИЕ:
1. Изучить методику культивирования микроводорослей.
2. Изучить способы разведения ракообразных, используемых в качестве кормовых организмов для объектов аквакультуры.
3. Изучить способы выращивания полихет, дождевого червя, хирономид, трубочника.
4. Проанализировать для каких видов рыб используют кормовые организмы, и определить видоспецифичность.
5. Ответить на вопросы для самоконтроля.
В связи с развитием индустриального рыбоводства в последние годы проблема разведения живых кормов приобрела большое значение. В мировой практике аквакультуры накоплен значительный опыт выращивания различных кормовых организмов беспозвоночных и водорослей, как в небольших количествах в лабораторных условиях, так и в массовых производственных масштабах. К ним относятся листоногие рачки (артемия и стрептоцефал), дафнииды (дафнии и моины), почвенные олигохеты, дождевые черви, коловратки, личинки хирономид, микроводоросли.
Процесс производства микроводорослей
Процесс производства микроводорослей включает: хранение культур; подготовку инокуляционного (посевного) материала; подготовку питательных сред; выращивание водорослей.
Хранение культур
Водоросли хранят на жидкой или твердой агаризированной среде Уолна в пробирках. Для приготовления твердой среды используют 1,2% раствор агара. Посев культур можно осуществлять один раз в месяц. Хранить следует на северном окне или в люминостате (освещенность 1-2 кЛк).
Подготовка инокуляционного материала
Инокуляционный материал лучше готовить поэтапно, увеличивая объем культиваторов и переходя от менее концентрированных сред к более концентрированным. Начинать следует со среды Уолна и колбочек на 100 мл, затем объем надо постепенно увеличивать до 5-20 л, используя при этом среды, предназначенные для выращивания водорослей в крупномасштабных культиваторах.
Приготовление питательных сред
Для культивирования микроводорослей предложено много питательных сред, представляющих собой комбинации растворов солей и биогенных элементов (азота и фосфора), а также микроэлементов.
Питательные среды для морских микроводорослей готовят на натуральной или искусственной (17-18 г морской соли в 1 л дистиллированной воды) морской воде, а для пресноводных используют дистиллированную или водопроводную воду. Источниками азота могут быть мочевина, азотно-кислый калий или натрий, аммофос, диаммонийфосфат; источниками фосфора - одно- или двухзамещенный фосфорнокислый калий или натрий, аммофос, нитроаммофоска. Очень важно, чтобы в среде содержался калий, как стимулятор роста. Для хранения водорослей, а также для выращивания их в бутылях, колбах, полиэтиленовых мешках, небольших бассейнах следует применять среду Уолна или Гольдберга.
Перед внесением в выростные емкости с личинками рыб, моллюсков, коловраток клетки водорослей нужно отделить от среды (отсепарировать, отцентрифугировать).
Выращивание водорослей
В искусственных условиях для культивирования водорослей используют специальные емкости культиваторы. Различают культиваторы открытого и закрытого типа. В первых водорослевая суспензия не изолирована от атмосферы. Они, как правило, просты по конструкции, дешевы, удобны в эксплуатации, но обычно дают низкую плотность суспензии микроводорослей.
Конструкции культиваторов закрытого типа (рис. 2) обеспечивают полное регулирование параметров выращивания вне зависимости от внешних условий.
Конструкции культиваторов разнообразны, но в общей схеме содержат: реактор - резервуар, в котором происходит рост и размножение культуры; блок освещения, питания культуры, отбора урожая, контроля и управления.
Рисунок 2 - Культиватор закрытого типа для выращивания водорослей
В рыбоводных хозяйствах водоросли удобно выращивать в полиэтиленовых мешках, подвешенных на металлической стойке, в 10-20 литровых бутылях или в аппаратах Вейса, соединенных в батареи и установленных перед двумя панелями из люминесцентных ламп. Бутыли следует круглосуточно продувать смесью воздуха, содержащей 1% СО2.
Для выращивания микроводорослей широко используют циркуляционные культиваторы, барботажного типа, а также культиваторы трубчатого типа.
Процесс культивирования можно вести в двух режимах: накопительном и проточном. Накопительный режим характеризуется непрерывным накоплением биомассы водорослей до тех пор, пока не будут потреблены все биогены и прекратится рост водорослей. При проточном культивировании постоянно часть водорослей изымается, часть культивируемой среды заменяется на свежую. Процесс культивирования при проточном методе может длиться 1 месяц и дольше.
При искусственном разведении некоторых видов морских рыб (кефаль, камбала) только что выклюнувшихся личинок часто помещают в так называемую «зеленую воду» - слабоконцентрированную суспензию одного или нескольких видов морских водорослей (монохризиса, морской хлореллы и др.), которые стабилизируют гидрохимический режим в бассейнах.
Разведение моин
Моины относятся к тому же семейству (Daphniidae), что и дафнии, но к другому роду (Moina). Моина (рис. 4) неприхотлива к кислороду и легко переносит высокую окисляемость среды.
Рисунок 4 – Моина
Для культивирования моин используют бетонные бассейны размером 2,5×1,5×0,7 м. На 1 м3 воды вносят 500 г кормовых дрожжей.
Для получения M. macrocopa в закрытом помещении используют обогреваемые бассейны, расположенные в два яруса. В помещении располагаются один над другим 20 дюраллюминевых бассейнов длиной 2,5 м, шириной 1,5 м и высотой 0,7 м каждый. К бассейнам, помимо водопроводных труб, подающих воду, подведены трубы парового отопления, которые проходят по дну бассейна. Температура воды в бассейнах поддерживается на уровне 25-30°С. При зарядке 30-40 г/м3 моин культуру подкармливают дрожжами по 50 г/м3 каждые 2 дня. Продукция моин в культиваторах составляет 40-50 г/м3 в сутки.
Существует несколько типов культивирования Cladocera: непроточный, проточный, а также различные сочетания этих двух типов.
В одноканальной системе вода и корма поступают с культивируемыми животными, а оттуда вместе с водой уходят продукты метаболизма и образовавшаяся в культуре конечная продукция культивируемых животных.
В двухканальной системе вода или вода с кормом поступают в культиватор, а затем вместе с метаболитами и полезной продукцией животных выходят из культиватора. По второму каналу в культиватор подаются корма или происходит съем продукции животных.
В трехканальной системе поступление воды и выход ее с метаболитами идут по одному каналу, а подача кормов и съем продукции животных по двум другим каналам.
В комбинированной системе вода или вода с кормами подается сначала по одному каналу в большой резервуар, а оттуда по многим каналам поступает в емкость с культивируемыми животными. Вода с продуктами обмена уходит из агрегата по многим каналам и затем попадает в один общий канал.
Разведение стрептоцефала
По внешнему виду стрептоцефал (рис. 6) очень похож на артемию, но несколько крупнее. Самцы отличаются от самок тем, что их антенны, расположенные на голове, сильно удлинены, имеют добавочные ветви и часто сложно закручены. У самок они короткие и листообразно расширенные. Кроме того, у самок хорошо заметны яйцевые мешки.
Стрептоцефалы размножаются только половым путем. Соотношение самок и самцов в популяции всегда примерно одинаково. При температуре 20°С рачки достигают половой зрелости в возрасте около трех недель с момента вылупления. К этому времени они имеют длину около 15 мм. Самки мечут яйца через каждые 3-5 дней. За весь жизненный цикл самка делает 15-25 кладок, выметывая в общей сложности 4-5 тыс. яиц, диаметром около четверти миллиметра.
Выметанные яйца всегда опускаются на дно. Они имеют плотную окрашенную в коричневый цвет, сильно сморщенную оболочку. В присутствии взрослых особей они не развиваются и накапливаются на дне водоемов вместе с илом и экскрементами стрептоцефалов.
Как известно, науплии артемии могут жить в пресной воде всего несколько часов. Не съеденные мальками, они погибают и ухудшают гидрохимические показатели воды. Науплии стрептоцефалов выгодно отличаются от науплиев артемии тем, что они могут жить и развиваться в пресной воде; их выклев идет постепенно, причем прямо в емкостях с мальками. Являясь фильтраторами, подросшие науплии очень эффективно очищают воду от бактериальной мути.
Рисунок 6 – Стрептоцефал
а – самка; б – самец
Для инкубации берут либо собранные в естественных водоемах, либо высушенные для хранения яйца. Развитие сухих яиц начинается с момента погружения в воду. В лабораторных условиях стрептоцефала выращивают в стеклянных кристаллизаторах или аквариумах. При производственном разведении используют различные бассейны. Их заполняют речной, озерной или прудовой водой при условии ее высокой минерализации. В противном случае следует использовать дождевую или снеговую воду. Водопроводную воду предварительно выдерживают для удаления свободного хлора. Толщина воды не должна превышать 30-40 см.
Оптимальная температура инкубации при достаточном количестве кислорода 20°С. Среда должна быть нейтральной. Выклев науплиев из яиц растягивается до двух недель.
На ранних стадиях развития стрептоцефал питается в основном бактериальными и дрожжевыми клетками. Этот вид корма вполне приемлем для рачков старших возрастных групп, но лучше их кормить смесью водорослевых и дрожжевых клеток в концентрации 25-30 мл сырой биомассы корма на 1 л воды. Стрептоцефалы очень чувствительны к недостатку пищи. Даже непродолжительное голодание приводит к их гибели.
Оптимальная плотность посадки взрослых рачков 4-6 экз./л, причем на двух самок достаточно иметь одного самца. При высокой плотности (100 и 250 экз./л) рост и созревание сильно замедленны.
О хорошем состоянии культуры судят по ряду признаков. Интенсивно питающиеся рачки на пятый день жизни имеют длину тела около 2 мм, на 15-й - 8-9 мм, на 25-й день - 15-16 мм. У молодых рачков окраска тела бледно-розовая, у половозрелых - оранжево-коричневая и зеленовато-коричневая. Голодающие рачки становятся почти белыми, часто с черными пятнами на грудных ножках. Они опускаются на дно и взмучивают ножками ил. При достаточном количестве пищи рачки держатся в толще воды.
Сбор яиц производится со дна емкости сифоном. Для облегчения процесса сбора среда приводится во вращательное движение, при котором осевшие на дно экскременты и яйца собираются в центральной части емкости. Сбор яиц значительно упрощается, если рачков содержат в емкости с коническим дном, снабженным краном или зажимом. Яйца от экскрементов отделяют взмучиванием или центрифугированием.
При больших масштабах выращивания стрептоцефала в бассейнах, рачков-производителей содержат до момента их гибели (около 2 мес.). За этот срок на дне бассейна накапливается большое количество яиц, вылупление метанауплиусов из которых начнется только с исчезновением взрослых рачков. Бассейн может быть частично спущен так, чтобы не были взмучены и унесены с водой накопившиеся на дне яйца. При благоприятных температурных условиях бассейны заливают свежей водой, после поступления которой сразу начинается развитие яиц. Сроки появления науплиев зависят от температуры.
Высушенные в чистом виде яйца подлежат использованию в течение 4-5 мес. Для длительного хранения яйца высушивают в иле или тонком песке.
Разведение коловраток
Для молоди выращиваемых рыб в качестве стартового «живого» корма используют коловраток (рис. 7).
Рисунок 7 – Коловратка (Philodins acuticornis)
Коловраток Philodins acuticornis культивируют в сосудах емкостью 200 мл с пластинками из оргстекла внутри. Ночью культура освещается зеркальными лампами. Кормление осуществляется хлореллой и дрожжами из расчета 0,4 г/л (по сухой биомассе). Свежая среда с кормом подается из резервуара помещенного над культиватором.
Культивируют коловраток в бетонном бассейне, который заливают по 2 м3 воды, удобряют ее кормовыми дрожжами и скошенной, слегка провяленной травой. На 1 м3 воды вносят 500 г дрожжей и 10 кг трав. Величина маточной культуры не должна быть меньше 3 г/м3 воды. В массовом количестве коловратки появляются в бассейнах при температуре воды 22-24°С через 10-12 суток.
Разведение олигохет
Из малощетинковых червей (олигохет) в основном культивируют белого энхитерия. Наилучший рост и размножение наблюдается при температуре 15-21°С, максимальная продолжительность жизни червей 8-9 месяцев. К свету энхитерии относятся отрицательно. Половой зрелости достигают на 21-22 день при длине тела 15-20 мм и массе 5-9 мг. Размножение происходит яйцами, заключенными в коконы. В среднем, в каждом коконе около 10 яиц. Энхитерии питаются разлагающимися органическими веществами растительного и животного происхождения, почвенными бактериями и грибами.
Разводят олигохет в почве. Большое значение имеет качество почвы, ее структура и влажность. Черви хорошо переносят колебания рН в пределах 5,3-7,2.
В кислые торфяные почвы добавляют известь и небольшое количество перегноя, в щелочные - гипс. Олигохет разводят в деревянных ящиках-террариумах размером 75×50×18 см. Слой грунта в ящике должен быть высотой 15 см. На дно ящика желательно укладывать слой торфа. Червей целесообразно вносить в почву вместе с грунтом, в котором они находились раньше. Такой способ позволяет ускорить развитие олигохет, поскольку вместе с взрослыми формами заносятся коконы с яйцами. Помещают червей на глубину 3-4 см, при плотности культуры не менее 100 г/м2. Ящики-террариумы помещают в специальные помещения - олигохетники. В них имеются металлические стеллажи в виде стоек с гнездами, в которые вставляются ящики, размещаемые в несколько ярусов. Высота стойки 2,8 м, ширина 1,7 м, нижний ярус располагается на расстоянии 25-30 см от пола. Площадь террариума определяется по общей максимальной потребности олигохет в цикле с учетом 15% резервов. Террариум работает круглосуточно. Олигохет лучше всего выращивать при следующих условиях: температура 16-18°С, влажность воздуха 60-70%, а почвы 23-25% со слабокислой или нейтральной активной реакцией среды.
Червей кормят различными овощами, фруктами и их отходами, мучными сметками и другими мучными отходами, крупами, отрубями, кормовыми дрожжами, листьями деревьев, дикими растениями и др. Корма животного происхождения употреблять не рекомендуется, так как они способствуют развитию в большом количестве врагов олигохет.
Овощи следует предварительно измельчить и заварить; пропустить через мясорубку, а затем вносят в виде пюре или жидкой каши. Чем выше степень измельчения корма, тем больше его поедаемость. Обработка белковых дрожжей ограничивается разведением их в теплой воде, на 1 кг сухих дрожжей 4 л воды. Мучные сметки вносят в виде жидкого теста, к ним добавляют 25-30% отрубей. Эту смесь разводят из расчета 1 кг на 2 л воды. Корма задают в 4-6 бороздках глубиной 3-4 см. После внесения корма бороздки засыпают землей слоем не менее 3 см. Кормление производят 1 раз в 7 дней. Успешное кормление червей возможно лишь во влажном и рыхлом грунте. При достижении биомассы червей 750 г/м2 производят съем продукции. Отбор червейиз земли осуществляется на основе избегания червями нагрева и яркого освещения. При воздействии этими факторами сверху черви концентрируются на дне, откуда их забирают.
При круглогодичном периоде работ олигохетника и кратковременном периоде выращивания молоди большое значение имеет возможность длительного хранения полученных в результате культивирования червей. Их содержат в течение нескольких месяцев при температуре 0-2°С. Такие условия создаются в ящиках, установленных в специальной холодильной камере, и энхитерия можно хранить в течение 4 месяцев. При таких условиях они немного теряют в массе.
Главным врагом олигохет являются клещи, которые разрушают коконы, поедают яйца, а иногда червей.
Разведение дождевого червя
Дождевые черви (рис. 8) содержат 70% белка, провитамины D, фосфолипиды, до 55% ненасыщенных жирных кислот, 22% насыщенных, 12% полиеновых жирных кислот.
Рисунок 8 – Дождевой червь
Оптимальные условия развития: температура субстрата 22±5°С, влажность 75±10%, рН 7±0,5. Цикл развития длится 160±2 суток. В течение года при этих условиях черви размножаются 2 раза, давая прирост по биомассе в 500 раз. При плотности посадки червей 0,5 кг на 1м2 за цикл размножения получают 70-100 кг живых червей на 1 т абсолютно сухой органической массы.
В настоящее время в осетроводстве широко используется "красный калифорнийский" червь, он отличается от своих диких сородичей более высокой плодовитостью и продолжительностью жизни. В условиях калифорнийского климата культивирование проходит в наземных культиваторах, специальных помещений не требуется. В течение 2 месяцев популяция из 30-50 тыс. особей перерабатывает на 1 м2 культиватора до 300 кг подстилочного навоза, превращая его в гумусное удобрение. Биомассу червей отделяют и готовят из нее белковую муку.
Разведение хирономид
Для повышения рыбопродуктивности прудов за счет личинок хирономид (рис. 9), излюбленной пищи рыб, применяют различные способы привлечения к водоемам взрослых особей (комаров) из семейства хирономид для откладки яиц. Для привлечения комаров положительную роль играют деревья, посаженные на дамбах. При благоприятных условиях из отложеных яиц через 2-3 дня выклевываются личинки.
Рисунок 9 - Личинки хирономид
С наступлением весны при температуре 10-12°С начинается расселение водных насекомых после зимовки в естественных водоемах.
Хирономиды питаются водорослево-бактериальной пищей. Установлена зависимость между температурой, количеством пищи и скоростью роста и развития хирономид. Применение минеральных и органических удобрений способствует увеличению биомассы хирономид в прудах. Также для разведения хирономид используется другой метод. Имеются две светлые комнаты. Одна для содержания маточного роя комаров, другая для личинок. Рой содержат при температуре 20-220С. Половозрелые комары не питаются, откладывают яйца и умирают. Продолжительность жизни 3-5 суток. Яйца они откладывают в кюветы, заполненные водой на 2-3 см, выклев начинается через 40-65 часов. При появлении личинок чашки переносят во вторую комнату с температурой 18ºС и перекладывают в кюветы с жидким илом. Личинок кормят размоченными дрожжами. После 10-12 суток личинок освобождают от ила с помощью сита и промывают водой.
Разведение трубочника
Трубочник (Tubifex tubifex) (рис. 10) является ценным универсальным кормом для рыб с усвояемостью 71-85%. Ими кормят как мальков, так и взрослых рыб. О питательной ценности трубочника можно судить по данным, приведенным в таблице 1.
Трубочник - обитатель мелководных участков медленно текущих ручьев и речек, канав и водоемов со стоячей водой. Наибольшие скопления его бывают в местах сброса вод со скотных дворов, пивоваренных заводов и других пищевых предприятий.
Рисунок 10 - Трубочник
Таблица 1
Химический состав основных кормовых объектов, %
| Корма | Углеводы, включая хитин | Жиры | Белки | Минеральные вещества | Вода |
| Трубочник | |||||
| Мотыль | |||||
| Дафнии | 0,5 | 1,5 |
Они питаются в основном органическими остатками грунтов водоемов, пропуская через себя за сутки количество грунта, превышающее их собственную массу во много раз. При этом грунт минерализуется и освобождается от остатков органического происхождения. Таким образом, происходит биологическое самоочищение загрязненных водоемов.
Размножаются трубочники только половым путем, в основном в летние месяцы. В коконах содержится по нескольку яиц, из которых уже через месяц появляются маленькие трубочники.
Среди известных способов разведения тубифицид надежного способа до сих пор не разработано. Тем не менее, его успешно культивируют в проточной воде на органических отходах (коровьем навозе). В таких установках на 1 кг трубочника требуется 18 кг навоза и 38 л воды.
С целью снижения расхода воды при выращивании трубочника за рубежом была разработана установка замкнутого типа небольших размеров, размещаемая на полках и стеллажах. Производительность установки 5,6 кг/месс. трубочника при расходе навоза 25 кг на 1 кг червя и 193 л воды в месяц.
Установка состоит из 270-л танка - накопителя размером 75×60×60 , установленного на высоту 3 м. Вода поступает в верхнюю часть танка и выливается из нижней в лотки. Лотки объемом 18 л каждый размещены по 12 шт. в три ряда на рамах из уголка. Размер лотка 45×30×15 см. Между собой они соединены полихлорвиниловыми трубками диаметром 1,9 см, регулирующими уровень воды до 12 см.
Вода из лотков со скоростью 86 л/сут поступает в отстойник, в котором осаждаются частицы размером от 1000 мкм, и далее в блок фильтрации - емкость с установленными в нее двумя фильтрами. Фильтр представляет собой две перфорированные цементные пластины, пространство между которыми заполнено песком. Один фильтр заполнен крупным песком (размер частиц менее 5000 мкм), другой - мелким песком (размер частиц более 100 мкм).
Блок аэрации и денитрификации состоит из полихлорвиниловых трубок диаметром 0,5 см, заполненных чередующимися кусочками гравия, древесного угля, известковых раковин, песком. Воздух продувается через трубки. Блок устанавливают в танк, оборудованный электрическим датчиком уровня воды, который при достижении критического значения уровня включает насос.
Лотки заполняют на 2/3 глубины субстратом, состоящим из навоза (75%) и мелкого песка (25%). Затем вносят культуру червей в количестве 400 экз./м2. Оптимальная скорость тока воды через лотки - 100 мл/мин.
Одним из существенных недостатков данного метода является вымывание током воды навоза и молодых червей (около 60%).
Лабораторная работа № 7
БИОЛОГИЧЕСКИЕ ОСНОВЫ РАЗВЕДЕНИЯ ЖИВЫХ КОРМОВ В ИНДУСТРИАЛЬНОЙ АКВАКУЛЬТУРЕ
Цель работы: изучить методы разведения живых кормов в индустриальной аквакультуре.
Материал и оборудование: фотографии, слайды, плакаты, макеты.
ЗАДАНИЕ:
1. Изучить методику культивирования микроводорослей.
2. Изучить способы разведения ракообразных, используемых в качестве кормовых организмов для объектов аквакультуры.
3. Изучить способы выращивания полихет, дождевого червя, хирономид, трубочника.
4. Проанализировать для каких видов рыб используют кормовые организмы, и определить видоспецифичность.
5. Ответить на вопросы для самоконтроля.
В связи с развитием индустриального рыбоводства в последние годы проблема разведения живых кормов приобрела большое значение. В мировой практике аквакультуры накоплен значительный опыт выращивания различных кормовых организмов беспозвоночных и водорослей, как в небольших количествах в лабораторных условиях, так и в массовых производственных масштабах. К ним относятся листоногие рачки (артемия и стрептоцефал), дафнииды (дафнии и моины), почвенные олигохеты, дождевые черви, коловратки, личинки хирономид, микроводоросли.
КУЛЬТИВИРОВАНИЕ ОДНОКЛЕТОЧНЫХ ВОДОРОСЛЕЙ
В настоящее время культивируют и используют для целей аквакультуры микроводоросли следующих видов;
Зеленые(Chlorophyceae): Chlorella sp. marina, Chlorella vulgaris, Platymonas viridis Butch, Dunaliella tertiolecta Dr., Scenedesmus quadricanda.
Синезеленые (Cyanophyta): Spirulina platensis.
Диатомовые (Bacillariophyceae): Nitzschia closterium, Phaeodactylum triocornuturn Bohl.
Золотистые (Chrysophyceae): Monochrysis lutheri Dr.
Кормовая ценность культивируемых водорослей различна, ее определяют в зависимости от объекта разведения.
Все кормовые водоросли должны отвечать следующим условиям: размеры и формы (желательно без шипов и выростов) должны быть потребляемыми консументами, клеточные стенки легко перевариваемыми, нетоксичными, химический состав должен соответствовать пищевым потребностям выращиваемых объектов.
Представители рода Dunaliella лишены плотной оболочки, поэтому хорошо перевариваются и усваиваются беспозвоночными. Клетки, снабженные жгутиками, подвижны и долго не оседают. Биомасса водорослей содержит около 50% белка, витамины, богата каротиноидами. В отношении липидного состава отмечается определенная специфика: клетки дуналиэллы почти не содержат высоконасыщенных жирных кислот (ВНЖК), во многом определяющих ценность вида корма для личинок рыб. По этой причине не рекомендуется использовать дуналиэллу при искусственном разведении камбаловых и кефалевых рыб, но для устриц эти водоросли являются ценным кормом.
Представители рода Chlorella(рис. 1) содержат около 45% белка, витамины, а морские штаммы хлореллы – значительное количество ВНЖК, что делает их ценным кормом при морском рыборазведении. В марихозяйствах Японии морскую хлореллу широко используют при разведении морских рыб и креветок. Как объект культивирования хлорелла очень технологична: отличается быстрым ростом, не обрастает стенок культиваторов, устойчива к механическим воздействиям и заражению другими видами водорослей. Однако из-за плотной оболочки не может быть рекомендована в качестве корма для устриц.
Рисунок 1 – Chlorella
Золотистая микроводоросль Monochrysis luteri - один из наиболее перспективных видов для использования в марикультуре: ее высокая кормовая ценность определяется мелкими размерами клеток, высоким содержанием ВНЖК. Эта водоросль может служить кормом для личинок устриц, морских, рыб, коловраток. Обладая жгутиками, клетки монохризиса около суток не оседают в выростных емкостях. В период культивирования водоросли не обрастают стенок культиваторов, не разрушаются под действием насоса и положительно реагируют на активное перемешивание и высокую облученность при густой культуре монохризиса.
Микроскопическая синезеленая водоросль спирулина обладает высокими пищевыми качествами. В клетках водоросли содержится до 75-80% белка (для сравнения в говядине - 18%), провитамин А, витамины группы В, фитогормоны. Оболочка спирулины тонкая и легко разрушается при пищеварении.