Пониженной концентрации кислорода

Ауксотрофы

хемолитотрофы

прототрофы

фототрофы

1.2. Микроорганизмы, для роста которых необходимо наличие в среде органических веществ, называются:

Гетеротрофы

ауксотрофы

хемолитотрофы

прототрофы

фототрофы

1.3. Микроорганизмы, использующие в процессе метаболизма химическую энергию неорганических соединений, называются:

гетеротрофы

ауксотрофы

Хемолитотрофы

прототрофы

фототрофы

1.4. Примерами смесей, содержащих различные факторы роста, являются:

пептон

дрожжевой экстракт (33%)

кукурузный экстракт(33%)

мясной экстракт

дрожжевой аутолизат(34%)

триптон

1.5. Выберите натуральные среды для микроорганизмов:

безбактериальная речная вода(33%)

среда Эндо

свернутая сыворотка(33%)

кровяной агар(34%)

цитратный агар

1.6. Выберите синтетическую среду:

безбактериальная речная вода

Среда Эндо

свернутая сыворотка

кровяной агар

20% желатина

1.7. Среда Эндо по назначению является:

универсальной

дифференциально-диагностической(50%)

элективной(50%)

синтетической

1.8. Среды Гисса по назначению являются:

универсальными

Дифференциально-диагностическими

элективными

синтетическими

1.9. Кровяной агар по назначению является:

Универсальным

дифференциально-диагностическим

элективным

синтетическим

1.10. Для создания элективных сред к ним добавляют следующие селективные добавки:

антибиотики(25%)

углеводы

хлористый натрий 5-10%(25%)

желатин

фуксин(25%)

соли желчных кислот(25%)

агар-агар

1.11. Селективные добавки в питательной среде:

способствуют росту определенных родов и видов бактерий

изменяют свой цвет в зависимости от использования субстрата

Препятствуют росту сопутствующей микрофлоры

содержат факторы роста

1.12. Элективные среды применяют:

для роста большинства микроорганизмов

для дифференциации микроорганизмов по их биохимическим свойствам

Для преимущественного роста микроорганизмов одного рода, семейства или другого таксона

для роста анаэробных микроорганизмов

1.13. В дифференциально-диагностических средах применяют такие индикаторы рН, как:

фенолфталеин

феноловый красный(33%)

бромтимоловый синий(33%)

акридиновый оранжевый

нейтральный красный(34%)

метиленовый синий

генциановый фиолетовый

1.14. В твердых питательных средах уплотняющими агентами являются:

агар-агар(25%)

силикагель(25%)

аммонийные квасцы

каррагинан(25%)

полипропилен

желатин(25%)

вазелин

1.15. Любая дифференциально-диагностическая среда содержит следующие компоненты:

агар-агар

субстрат(50%)

глюкозу

индикатор(50%)

соли железа

аминокислоты

1.16. При добавлении 0,3% агар-агара среда будет:

жидкой

Полужидкой

твердой

сыпучей

1.17. Желатин плавится при температуре:

около 25^оС

около 30^оС

около 37^оС

около 45^оС

1.18. Применение физических и химических методов для уничтожения всех форм и видов микроорганизмов на поверхности и внутри объектов внешней среды называется:

дезинфекция

антисептика

Стерилизация

асептика

химиотерапия

1.19. Для стерилизации питательных сред применяют:

автоклавирование(33%)

обработку сухим жаром

пастеризацию

фильтрацию через «свечи» Шамберлана и Беркефельда(33%)

ультрафиолетовое облучение

тиндализацию(34%)

1.20. Для стерилизации жидких сред применяют фильтры:

бумажные

мембранные(25%)

ядерные(25%)

ватно-марлевые

«свечи» Шамберлана и Беркефельда(25%)

фильтры Зейтца(25%)

1.21. К мембранным фильтрам относятся:

бумажные

нитроцеллюлозные(50%)

ватно-марлевые

«свечи» Шамберлана и Беркефельда

ядерные(50%)

асбестовые

1.22. Выберите режим обработки при тиндализации:

однократно при температуре 100 ^оС

однократно при температуре 60-80 ^оС

трехкратно при температуре 100 ^оС с интервалом в сутки

трехкратно при температуре 60-80 ^оС с интервалом в сутки

трехкратно при температуре 110 ^оС с интервалом в 3 ч

трехкратно при температуре 60-80 ^оС с интервалом в 3 ч

1.23. Выберите режим обработки при пастеризации:

однократно при температуре 100 ^оС

однократно при температуре 60-80 ^оС

трехкратно при температуре 100 ^оС с интервалом в сутки

трехкратно при температуре 60-80 ^оС с интервалом в сутки

трехкратно при температуре 100 ^оС с интервалом в 3 ч

трехкратно при температуре 60-80 ^оС с интервалом в 3 ч

1.24. Для контроля стерильности применяют методы:

химический(33%)

физический(33%)

физико-химический

биологический(34%)

органолептический

2.1. Для культивирования микроорганизмов существенное значение имеют не только состав питательной среды, но и такие факторы, как:

кислотность среды(20%)

аэрация(20%)

атмосферное давление

температура(20%)

свет(20%)

влажность(20%)

ионизирующее излучение

2.2. Сульфитное число определяют с целью оценки:

концентрации кислорода в среде

Скорости аэрации среды

интенсивности поглощения кислорода бактериями

насыщенности среды кислородом

2.3. Принципы, разработанные Р. Хангейтом, применяют для культивирования:

облигатных аэробов

факультативных анаэробов

микроаэрофилов

Облигатных анаэробов

2.4. Микроаэрофилы – микроорганизмы, растущие при:

повышенной концентрации кислорода

пониженной концентрации кислорода

повышенной концентрации азота

пониженной концентрации азота

повышенной концентрации углекислого газа

пониженной концентрации углекислого газа

2.5. К способам хранения микроорганизмов относятся:

периодические пересевы на свежие питательные среды(20%)

высушивание жидкой среды при 80^оС

хранение на питательной среде под вазелиновым маслом(20%)

хранение в лиофилизированном состоянии(20%)

хранение при низких или сверхнизких температурах(20%)

хранение в растворе глицерина в холодильнике

хранение на адсорбентах в высушенном состоянии(20%)

2.6. Ферментер используют для культивирования:

Аэробов

факультативных анаэробов

облигатных анаэробов

микроаэрофилов

2.7. Накопительной называют культуру, в которой:

микроорганизмы накапливаются в течение суток

содержится один вид микроорганизмов