Рефлекторное влияние с барорецепторов зоны позвоночной артерии на дыхание.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ: снижение давления в крови позвоночной артерии и регистрация дыхания.

ОБЪЕКТ ИССЛЕДОВАНИЯ: Кошка.

ОБОРУДОВАНИЕ: Станок для опыта, шприц, скальпель, ножницы, анатомический и зубной пинцеты, трахеотомическая канюля, капсула Марея, кимограф, 2%-й раствор новокаина и тиопентала.

ХОД РАБОТЫ:

1. Внутрибрюшинно вводим раствор тиопентала (40 мг/кг). Животное фиксируем в станке на спине.

2. Справа делаем кожный разрез от середины ключицы до расположения плечевой артерии в подмышечной впадине. Находим переход плечевой артерии в подключичную и, отслаивая мышечные группы, продвигаемся медиально по ее ходу до правой позвоночной артерии. Во избежание пневмоторакса аккуратно берем на лигатуру позвоночную артерию.

3. Соединим трахею через тройник с капсулой Марея и регистрируем дыхание, обращая внимание на его глубину и частоту, до и после зажатия (3-5 с) позвоночной артерии.

4. Затем в прилежащие к позвоночной артерии ткани вводим 0,5 мл новокаина. Через 20-30 мин повторно снижаем давление в позвоночной артерии.

5. Сравниваем пневмограммы, полученные при зажатиях позвоночной артерии до и после новокаинизации.

РЕЗУЛЬТАТЫ:

ВЫВОД:

ФИЗИОЛОГИЯ КРОВИ

Техника взятия крови для анализа.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ: Овладение техникой взятия крови для анализа у человека.

ОБЪЕКТ ИССЛЕДОВАНИЯ: Человек.

ОБОРУДОВАНИЕ: Стерильная игла – скарификатор однократного употребления, вата, 70%-й спирт, йод (спиртовая настойка), резиновые перчатки.

ХОД РАБОТЫ:

1. Смоченной спиртом ватой протереть концевую фалангу четвертого (безымянного) пальца левой руки исследуемого.

2. Взять скарификатор, пальцами другой руки слегка сдавить с боковых поверхностей подготовленную фалангу.

3. После подсыхания кожи фаланги произвести укол резким движением, чтобы кончик скарификатора вошел в мышцу до ограничения.

4. Первую каплю крови стереть сухой стерильной ватой и приступить к взятию крови для анализа.

5. Стереть остатки крови, смазать место укола йодом, приложить смоченную спиртом вату и прижать кончик пальца к ладони.

РЕЗУЛЬТАТ:

ВЫВОД:

Определение количества эритроцитов в крови.

ЦЕЛЬ РАБОТЫ: Овладеть техникой подсчета эритроцитов с помощью счетной камеры, определить их содержание в крови и дать заключение о соответствии полученных данных имеющимся стандартам.

ОБЪЕКТ ИССЛЕДОВАНИЯ: Кровь человека.

ОБОРУДОВАНИЕ: Микроскоп, счетная камера, покровные стекла, смесители, стаканчик, 70%-й спирт, йод, вата, 3%-й раствор хлорида натрия, консервированная кровь.

ХОД РАБОТЫ:

1. Взятие крови для анализа:

а) налить 3%-й раствор хлорида натрия в стаканчик;

б) сухим смесителем набрать кровь до отметки 0,5, насасывая ее грушей;

в) обтереть конец смесителя, набрать хлорида натрия до метки 101 для разведения в 200 раз;

г) осторожно перемешать кровь с реактивом.

2. Подготовка счетной камеры:

а) притереть покровное стекло к камере до появления колец Ньютона;

б) убрать из смесителя первую каплю, представляющую реактив, не смешанный с кровью;

в) поднести конец смесителя к краю покровного стекла и выпустить небольшую каплю;

г) через 1-2 мин начать подсчет.

3. Подсчет эритроцитов:

а) под малым увеличением микроскопа найти в камере сетку Горяева, затем перенести микроскоп на большое увеличение;

б) пользуясь правилом Егорова, подсчитать эритроциты в 5 расположенных по диагонали больших квадратах, разделенных на 16 малых;

г) данные заносить в предварительно подготовленную сетку.

РЕЗУЛЬТАТЫ:

1. Данные подсчета по квадратам

ч		£	Lf
ё>	7-	Ъ>
	Т		Т
ь"	//	Ч

	!*>	tv	ь
?	/о	/0	<0
/			/(

г? С	(О		(&
		Я
£	/<	ю	с;
	/	%	>

•	/	ч	У
г	с?		?
	/V	и
к	и		У

	/3	(к
v		г
/«•			у:
	/		У

2. Расчет содержания эритроцитов в 1 мкл по формуле:

количество эритроцитов = ,

где а – количество эритроцитов в 5 больших квадратах;

б – количество малых квадратов, в которых считались эритроциты (16·5=80);

в – степень разведения крови (200 или 100).

1/4000 – объем жидкости над малым квадратом (мкл)

3. Расчет содержания эритроцитов в 1 л крови

Содержание эритроцитов в 1 мкл	Содержание эритроцитов в 1 л

ВЫВОД: