Тема 8. Адаптация к воздействию.

Понятие об адаптациях. Виды адаптации.

Наиболее пластичные, устойчивые по отношению к антропогенным влияниям виды. Проблема эндемиков. Резервы адаптации. Урбанизирован­ные территории как новые адаптивные зоны для разнообразных форм живо­го. Отбор на безбоязненность к человеку.

Тема 9. Токсикологическое нормирование.

Критерии нормы экосистем. Параметры экосистем, подлежащие реги­страции при экологическом нормировании. Общая концепция экологическо­го нормирования. Понятия: ПДК, LD⁵⁰ и др. Методы определения предель­ных значений нагрузки. Санитарно-гигиенические нормы. Контроль содер­жания токсикантов в жилых и рабочих помещениях, продуктах питания и ле­карственных средствах.

Тема 10. Процедура нормирования в разных странах.

Практика регламентации природопользования: зарубежный и отечест­венный опыт.

Нормирование в США, Германии, Канаде, Японии, России. Нормиро­вание в Швеции, Великобритании.

Лабораторный практикум

№ п.п.	Наименование лабораторных работ	Количество часов
	Изменение цвета флавоноидных пигментов различных цветковых растений под влиянием рН среды, солей тяжелых металлов
	Определение токсичности сернистого газа, почв, воды, пестицидов методом высечек листьев (по разрушению хлорофилла)
	Оценка состояния окружающей среды по наличию, обилию и разнообразию видов лишайников (лихеноиндикация)
	Качественное распознавание минеральных удобрений, как возможных загрязнителей почв и сельхозпродукции
	Загрязнение пищевых продуктов нитратами и их определение в различных овощных куль­турах в зависимости от вида, сорта, органа, ткани
	Биотестирование токсичности субстрактов по проросткам различных растений-индикаторов
	Качественное определение легко- и среднерастворимых форм химических элементов в почвах городских улиц
	Определение состояния окружающей среды по комплексу признаков у хвойных

Лабораторная работа №1

Тема: Изменение цвета флавоноидных пигментов различных цветковых растений под влиянием рН среды, солей тяжелых металлов

Оборудование:пробирки в штативе (8-10 штук); стеклянные палочки; медицинские пипетки; ступки малые с пестиками; ворон­ки малые; марля.

Реактивы: дистиллированная вода; 5-10%-ные растворы H₂S0₄, НСl, NH₄OH; 5%-ные растворы солей тяже­лых металлов: PbNO₃, FeCI₃, ZnS0₄, CuS0₄, CoS0₄,средне- и слабоокрашенные лепестки цветков, содержащих ан­тоцианы или их предшественники: пиона, мака, розы, герани (мож­но высушенные); цветущие комнатные растений со средне- или слабоокрашенными цветками, содержащими антоцианы или их предшественники; кусочки лука и капусты фиолетовых сортов.

Ход работы:

1. Комочек ваты размером с просяное зерно смачивают в одном из растворов кислот, аммиака, указанных солей, прикрепляют лей­копластырем к листу или лепестку цветущего растения, выдержи­вают 1-1,5 часа, затем снимают. Реакцию учитывают как во время текущего занятия, так и через одну-две недели.

2. Кусочки лепестков свежих цветков, срезанную чешую фио­летового лука или листья фиолетовой капусты помещают в малую чашку Петри, заливают полностью или частично (в виде накалыва­ния) растворами кислот, аммиака или солей тяжелых металлов, сле­дят за изменением окраски.

3. Лепестки сухих или свежих антоциансодержащих растений заливают горячей дистиллированной водой, чтобы они размякли, растирают пестиком до состояния жидкой кашицы. Выжимают че­рез марлю и разливают по пробиркам, оставив образец раствора для контроля. Добавляют поочередно в каждую пробирку по несколько капель кислот (имитация кислых осадков), аммиака, растворов солей тяжелых металлов. Следят за последовательным изменением окраски.

4. Белые цветы слоновой кости или желтоватые цветки, содержащие антоцианы или их предшественники, окуривают парами аммиака, следят за изменением окраски.

Схема записи опытов

Название растений	Ответная реакция по изменению цвета при действии реагентов
Контроль	H2S04	НСl	NH4OH	FeCI3	PbNO3	ZnS04

Делают соответствующие выводы.

Лабораторная работа №2

Тема: Определение токсичности сернистого газа методом высечек листьев (по разрушению хлорофилла)

Оборудование:эксикаторы,фильтровальная бумага, чашка Петри, пробочное сверло, пинцеты, колбочки на 100 мл, воронки,пробирки в штативе (8-10 штук).

Реактивы: Na₂SO₃, H₂SO₄, вазелин, листья растений, находящихся в стадии вегетации.

Ход работы: На дно эксикатора насыпают Na₂SO₃ в объеме взятого тигелька, возле него устанавливают тигелек с 2-3 мл конц. H₂SO₄. На решетчатый круг эксикатора кладут одинаковые куски фильтровальной бумаги, смоченной отстоянной водой до полной влагоемкости, на бумагу укладывают диски (диаметром 2 см) межжилковой ткани листьев нижней стороной вверх, чтобы свободно шел процесс поступления газа через устьица, которые располагаются большей частью с нижней стороны листа. Диски высекают пробочным сверлом (10 дисков на каждый вариант). Крышку эксикатора плотно закрывают, края крышки предварительно промазывают вазелином.

Производят резкое движение эксикатором, чтобы внутри тигелек с кислотой опрокинулся на сульфит натрия, отмечают время начавшейся реакции. Реакции протекает по уравнению Na₂SO₃ + H₂SO₄ = SO₂ + Na₂SO₄ + H₂O. Через некоторое время наблюдается изменение цвета высечек листьев различных растений. Эта реакция может быть очень быстрой (у чувствительных видов растений) или более медленной. Выражается она в появлении хлоротичной каемки по краю высечки, отслаивании краешка от фильтровальной бумаги, а затем появлении некротической бурой ткани, которая постепенно распространяется на всю высечку. Учитывают время начала хлорозов и некрозов, число пораженных дисков (из 10), процент поражения, сравнивают с контролем (взятым за 100%). Контроль ставится с большими повторностями (не менее 30 дисков) в эксикаторе с чистым воздухом.

Строят кривые поражения листьев сернистым газом по сравнению с контролем; на оси абсцисс откладывают время экспозиции (час), а на оси ординат – процент пораженной ткани у высечек листа.

Лабораторная работа №3