Залам'ятайте! Далі всі етапи накривання стерильного столу повинні виі| куватися двома стерильними пінцетами, взятими із бікса

4. Двома стерильними пінцетами взяти із бікса клейонку, покласти її
стіл і розгорнути.

5. Двома стерильними пінцетами взяти із бікса стерильне простирадл
обережно на витягнутих руках розгорнути простирадло так, щоб
залишилося складене вдвічі. Закрити маніпуляційний стіл так, щоб
простирадла звисали на 20-30 см від його панелі з усіх сторін.

6. Двома стерильними пінцетами взяти із бікса друге простирадло. Роза
нуги його аналогічно першому.

7. Вдвічі складене простирадло накласти на стіл поверх першого. Rpocij
жити, щоб передні краї простирадла вільно відкривалися і на 8-Ю
опускалися вниз від передньої панелі столу. Таким чином, стерильні
стіл накривається так, щоб знизу було 4 стерильні шари простирадла,|
зверху — 2.

8. Стерильним пінцетом почергово взяти із бікса затискачі для білизни
накласти їх на вільні кінці верхньої частини простирадла. За допомог
затискачів для білизни медична сестра відкриває і закриває стерильні)
стіл.

9. Пінцети, за допомогою яких накривали стерильний стіл, вилучити
роботи.

10. До верхньої частини простирадла за допомогою голки прикріпиї
бірку. На бірці зазначити дату, час накривання стерильного столу і
ставити свій підпис.

11.Використовувати стерильний стіл можна протягом 6 годин.

12.Запам'ятайте! Забороняється торкатися руками до поверхні стерилі^
ного столу, відкривати руками стіл, класти на стіл робочий стерильни|
пінцет.

БЛОК "ПЕРЕДСТЕРИЛІЗАЦІЙНА ОЧИСТКА ВИРОБІВ МЕДИЧНОГО ПРИЗНАЧЕННЯ. ВИДИ СТЕРИЛІЗАЦ1"

БЛОК "ПЕРЕДСТЕРИЛІЗАЦІИНА ОЧИСТКА ВИРОБІВ МЕДИЧНОГО ПРИЗНАЧЕННЯ. ВИДИ СТЕРИЛІЗАЦІЇ"

Запам'ятайте! Одним із основних правил парентерального введення лікарсь--их препаратів є ретельне дотримування стерильності всього необхідного для ін'єкцій інструментарію і лікарських препаратів. Стерилізація — це знищення всіх мікроорганізмів і їхніх спор за допомогою фізичних та хімічних чинників.

блок "Передстерилізаційна очистка виробів медичного призначення. Види стерилізації" включає практичні навики:

Номер п/п	Назва практичного навику	Рівень відповідаль­ності
А. Б. В. Г. Г.	Передстерилізаційна очистка шприців та голок багаторазового використання. Контроль якості передстерилізаційної очистки. Стерилізація парою під тиском у паровому стерилізаторі. Контроль якості. Стерилізація в повітряному стерилізаторі. Контроль якості. Стерилізація медичного інструментарію методом кип'ятіння (в домашніх умовах).

Оснащення блоку:

ємність, промаркірована "Миючий розчин", миючі засоби "Біолот", "Лотос"; 27,5% розчин пергідролю, водопровідна та дистильована вода, водяний тер­мометр, йоршик, мандрен, реактиви для проведення контролю якості перед­стерилізаційної очистки, бікси, електричний стерилізатор, сухожарова шафа, автоклав.

СХЕМА НАПИСАННЯ АЛГОРИТМУ ПРАКТИЧНОГО НАВИКУ:

I. Місце проведення.

II. Оснащення робочого місця.

III. Попередня підготовка до виконання навику.

IV.Основні етапи виконання навику.

АиТЕРЕДСТЕРИЛІЗАШЙНА ОЧИСТКА ШПРИШВ ТА ГОЛОК БАГАТО­РАЗОВОГО ВИКОРИСТАННЯ.

Передстерилізаційна очистка передбачає видалення із виробів білкових, жирових, механічних забруднень і залишків лікарських препаратів. І- Місце проведення:

централізоване стерилізаційне відділення, кабінет доклінічної практики. Н- Оснащення робочого місця:

1. Шприци та голки багаторазового використання.

2. Ємність промаркірована "Миючий розчин".

3. Миючі засоби: "Біолот", "Лотос".

4. 27,5% розчин пергідролю.

5. Йоршик.

1.

БЛОК"ПЕР£ДСТЕРИЛІЗАЦІЙНА ОЧИСТКА ВИРОБІВ МЕДИЧНОГО ПРИЗНАЧЕННЯ. ВИДИ СТЕРИЛІЗАЦІ"

БЛОК°ПЕРЕДСТЕРИЛІЗАЦІЙНА ОЧИСТКА ВИРОБІВ МЕДИЧНОГО ПРИЗНАЧЕННЯ ВИДИ СТЕРИЛІЗАЦІ"

6.

6. Мандрен.

7. Водяний термометр.

8. Водопровідна вода.

9. Дистильована вода.

10. Сухожарова шафа.

///. Попередня підготовка до виконання навику:

- приготувати миючий розчин у промаркірованій ємності: Перший спосіб:

а) взяти 5г порошку "Біолот" і 995 мл води;

б) змішати порошок "Біолот" з водою.
Другий спосіб:

а) взяти 5г порошку "Лотос", 27,5% пергідролю, 978мл води;

б) змішати порошок "Лотос" з водою, а потім долити до розчину
миючого засобу пергідроль.

· миючий розчин, до складу якого входить порошок "Біолот", підігріти до
t +40-45°C. (Температуру контролювати водним термометром);

· миючий розчин, до складу якого входить порошок "Лотос", підігріти до
t+50-55°C. Запам'ятайте! Дуже важливо температуру розчину довести
саме до цифр, вказаних вище, тому що при кіснатній температурі біоло­
гічно активні речовини виділяються в розчин дуже повільно, а при більш
високій температурі вони руйнуються;

· миючий розчин, до складу якого входить порошок "Біолот", використо­
вується одноразово;

- миючий розчин, до складу якого входять синтетичні миючі засоби "Ло­
тос" або "Прогрес", використовується протягом однієї доби (з моменту
виготовлення). Підігрівати такий розчин можна до 6 разів на добу (при
умові, що колір розчину не змінюється).

- заготувати дистильовану воду.
IV. Основні етапи виконання навику:

1.Покласти шприци та голки в розібраному вигляді в ємність, промаркіро-
вану "Миючий розчин", заповнену теплим миючим розчином на 15 хв.
Шприци та голки повинні бути повністю занурені у розчин.

2.Через 15 хв. промити циліндри йоршиком, а поршні — марлевою сер­
веткою. Голки прочистити мандреном, а потім через кожну голку пропу­
стити миючий розчин.

3.Промити шприци та голки під холодною проточною водою, щоб звільни­
ти їх від миючого засобу. При використанні розчину, до складу якого
входить порошок "Біолот", промивання проводиться 2-3 хв., а при вико­
ристанні розчину, до складу якого входить порошок "Лотос", — 5-6 хв.

4. Провести контроль якості передстерилізаційної очистки. На залишки
захованої крові провести бензидинову, ортотолуїдинову або азопірамо-
ву пробу (навик "Б"). На залишки миючих засобів провести фенолфт³"
леїнову пробу (навик "Б".)

5. В ємності, заповненій дистильованою водою, промити протягом 1 *'•
шприци та голки від солей, які містяться у водопровідній воді (при сте"
рилізації солі осідають на стінках циліндра, поршня, в канюлі голки '

—

"^ порушують прохідність шприца і голки).

6. Поршні і циліндри на сітці стерилізатора, а голки — в малій упаковці
помістити у сухожарову шафу і просушити їх гарячим повітрям при тем­
пературі 80-85°С до повного зникнення вологи.

7. Після передстерилізаційної очистки сухі шприци у розібраному вигляді
та голки упакувати в крафт-пакети або у подвійні бавовняні мішечки,
помістити їх у підготовлений бікс з індикатором та провести стериліза­
цію в автоклаві.

Примітка: Передстерилізаційна очистка металевого медичного інструмен-,,. тарію проводиться аналогічно описаній передстерилізаційній очистці ,_: "й¹¹ шприців та голок багаторазового використання.

^(ОНТРОЛЬ ЯКОСТІ ПЕРЕДСТЕРИЛІЗАШЙНОЇ ОЧИСТКИ.

•'.Контроль передстерилізаційної очистки проводять санітарно-протиепідемічні йіИІнфекційні станції 1 раз у квартал. Самоконтроль у лікувально-профілак-'Йммих установах проводиться не рідше одного разу на тиждень старшою ме-Лмною сестрою відділення, а також самоконтроль в централізованому стери-Щвційному відділенні проводиться працівниками цього відділення. Контролю '* лягає 1% від виробів одного призначення, але не менше 3-5 одиниць із

(ТІЇ. Обстежувані вироби повинні бути кімнатної температури (бажано не

-і +25°С), гарячі вироби перевірці не підлягають.
;.;••• Бензидинова проба.

фіКсце проведення:

илізаційне відділення, маніпуляційний кабінет, перев'язувальний кабі-Іт, операційний блок. щення робочого місця: % розчин перекису водню. ,'фу, 2. 0,5-1% розчин солянокислого бензидину.

3. 50% розчин оцтової кислоти. ?t 4. Сірчанокислий бензидин. •і! 5. Пробірка — 2 шт.

6. Піпетки — 2 шт.

7.Контрольний інструмент.

Ш. Попередня підготовка до виконання навику:

- приготувати реактив №1:

змішати в рівних кількостях 0,5-1% розчин солянокислого бензидину і 3% розчин перекису водню;

- приготувати реактив №2:

у пробірку влити 5мл 50% оцтової кислоти. Додати 0,025г сірчанокис­лого бензидину. Обережно перемішати, щоб бензидин повністю роз­чинився. Додати 5мл 3% перекису водню;

- приготувати стерильний лоток і стерильну одноразову бавовняну сервет-
. ку розміром 3-5 см, складену в декілька шарів.

• Основні етапи виконання навику:

*• Контрольний інструмент покласти на бавовняну серветку, розміщену у лотку.

контрольний інструмент (скальпель, шпатель, пінцет) за допомогою

— - —

БЛОК "ПЕРЕДСТЕРИЛІЗАЦІЙНА ОЧИСТКА ВИРОБІВ МЕДИЧНОГО ПРИЗНАЧЕННЯ. ВИДИ СТЕРИЛІЗАЦІ"

піпетки нанести 2-3 краплі реактиву №1 або реактиву №2.

3.Визначити зміну кольору крапель реактиву. Враховувати зміну коль
тільки протягом 1 хв. після контакту реактиву із забрудненою ділянк

4.Зробити висновок: при зміні кольору реактиву на синьо-зелене за
влення проба вважається позитивною і вказує на недостатню передс
рилізаційну обробку інструмента, на залишки білкового характеру (гні^
кров тощо).

Ортотолуїди нова проба. /. Місце проведення:

стерилізаційне відділення, маніпуляційний кабінет, перев'язувальний

нет, операційний блок. //, Оснащення робочого місця:

1. 96° розчин етилового спирту.

2. Ортотолуїдин.

3. 50% розчин оцтової кислоти.

4. Дистильована вода.

5. 20% розчин перекису водню.

6. 3% розчин перекису водню.

7. Пробірки — Зшт.

8. Піпетки — Зшт.

9. Контрольний інструмент.

///. Попередня підготовка до виконання навику:

- приготувати реактив №1:

приготувати 4% розчин ортотолуїдина у 96° етиловому спирті (зб рігати у холодильнику). Влити у пробірку 5-10мл 4% спиртовог розчину ортотолуїдина. Добавити до нього в однаковій кількс 50% розчин оцтової кислоти. Добавити дистильовану воду 5-Ю

- приготувати реактив №2:

у пробірку влити 5мл 50% розчину оцтової кислоти. Додати 0,025^ ортотолуїдина. Обережно перемішати до повного розчинення орте толуїдине. Додати 5мл 3% розчину перекису водню.

- приготувати реактив №3:

приготувати 1% водний розчин ортотолуїдина, влити його в пр бірку. Додати в однаковій кількості 3% розчин перекису водню.

- приготувати стерильний лоток і стерильну одноразову бавовняну сервет|
ку розміром 3-5 см, складену в декілька шарів.

IV. Основні етапи виконання навику:

1. Контрольний інструмент покласти на бавовняну серветку, розміщену
лотку.

2. На контрольний інструмент (скальпель, шпатель, пінцет) за допомого*
піпетки нанести 2-3 краплі реактиву №2 або №3. У випадку, якщо
інструмент наноситься 2-3 краплі реактиву №1, необхідно на це ж міси
нанести ще 2-3 краплі 20% розчину перекису водню.

3. Визначити зміну кольору крапель реактиву. Враховувати зміну коль
тільки протягом 1 хв. після контакту реактиву із забрудненою ділянк

4. Зробити висновок: при зміні кольору реактиву на синьо-зелене забарв

БЛОК "ПЕРЕДСТЕРИЛІЗАЦІЙНА ОЧИСТКА ВИРОБІВ МЕДИЧНОГО ПРИЗНАЧЕННЯ. ВИДИ СТЕРИЛІЗАЦІ"

лення проба вважається позитивною і вказує на недостатню передстери-лізаційну обробку інструмента, на залишки білкового характеру (гній, кров тощо).

Азопірамова проба.

Проба з азопірамом за чутливістю не поступається бензидиновій і в 10 разів перевищує амідопіринову. /, Місце проведення:

стерилізаційне відділення, маніпуляційний кабінет, перев'язувальний кабі­нет, операційний блок. //. Оснащення робочого місця:

1. Амідопірин — 10 г, солянокислий анілін — 0,15 г, спирт етиловий 96° —
100 г.

2. 3% розчин перекису водню.

3. Пробірка.

4. Піпетка.

5. Контрольний інструмент.

///. Попередня підготовка до виконання навику:

- замовити в аптеці початковий розчин азопіраму:

амідопірин — 10 г солянокислий анілін — 0,15 г спирт етиловий 96° — 100 г

- зберігати розчин в закритому флаконі при температурі -t-4°C (в холодиль-

нику) протягом 2 місяців, в темному місці при кімнатній температурі — протягом 1 місяця;

- безпосередньо перед перевіркою якості передстерилізаційної очистки
виробів приготувати робочий розчин: змішати однакову об'ємну кількість
азопіраму і 3% розчин перекису водню.

IV. Основні етапи виконання навику:

1. На контрольний інструмент за допомогою піпетки нанести 2-3 краплі
реактиву.

2. Визначити зміну кольору крапель реактиву. Врахувати зміну кольору
тільки протягом 1хв. після контакту реактиву із забрудненою ділянкою.

3. Зробити висновок: при зміні реактиву спочатку на фіолетове, а потім на
рожево-бузкове забарвлення проба вважається позитивною і вказує на
недостатню передстерилізаційну очистку інструмента, на залишки кров'я­
них забруднень.

ФенолфталеТнова проба. '• Місце проведення:

стерилізаційне відділення, маніпуляційний кабінет, перев'язувальний кабі­нет, операційний блок. • Оснащення робочого місця:

1 1% спиртовий розчин фенолфталеїне.

2 Пробірка.

3 Піпетка.

• "опередня підготовка до виконання навику:

приготувати 1% спиртовий розчин фенолфталеїне.

БЛОК "ПЕРЕДСТЕРИЛІЗАЦІЙНА ОЧИСТКА ВИРОБІВ МЕДИЧНОГО ПРИЗНАЧЕННЯ. ВИДИ СТЕРИЛІЗАЦІ "

БЛОК"ПЕРЕДСТЕРИЛІЗАЦІЙНА ОЧИСТКА ВИРОБІВ МЕДИЧНОГО ПРИЗНАЧЕННЯ. ВИДИ СТЕРИЛІЗАЦІ"

IV. Основні етапи виконання навику:

1. На контрольний інструмент за допомогою піпетки нанести 1-2 кра
1% розчину фенолфталеїне.

2. Визначити зміну кольору крапель реактиву. Враховувати зміну кольор
тільки протягом 1 хв. після контакту реактиву із забрудненою ділянк

3. Зробити висновок: при зміні кольору реактиву на рожеве забарвленн
проба вважається позитивною і вказує на недостатню передстерилізаційн
обробку інструмента, а саме на наявність залишків миючого засобу.

В. СТЕРИЛІЗАЦІЯ ПАРОЮ ПІД ТИСКОМ У ПАРОВОМУ СТЕРИЛІЗА­ТОРІ. КОНТРОЛЬ ЯКОСТІ.

Паровим методом можна стерилізувати білизну (халати, простирадла, руц

ники), перев'язувальний матеріал (марлеві серветки, тампони, турунди, вати

кульки), вироби з гуми (рукавички, катетери, бужі), шприці, голки багатора

вого використання, тощо.

І.Місце проведення:

централізоване стерилізаційне відділення. II, Оснащення робочого місця:

1. Автоклав.

2. Бікси, заповнені матеріалом.

3. Стерильне простирадло.

4. Стіл.

///. Попередня підготовка до виконання навику:

· відкрити отвори в біксах;

· помістити бікси у внутрішню камеру автоклава;

· кришку автоклава герметичне закрити.
IV. Основні етапи виконання навику:

1. Через лійку в автоклав налити воду, рівень якої визначити по водоміри?
му склу.

2.Запобіжний кран встановити на покажчик тиску, при якому передб
чається проводити стерилізацію 147-196 кПа (1,5-2 атм.).

3.Кран, який відводить повітря і пару, закрити.

4.Тиск в автоклаві довести до 98 кПа (1атм.), відкрити кран і випустит^
залишки повітря разом із парою.

5.Після цього кран повторно закрити і довести до 147-196 кПа. Момен
підняття тиску до заданого режиму вважати початком стерилізації.

6. При тиску 147 кПа (1,5атм.) і температурі 120°С стерилізація продов
жується 45 хв., а при тиску 196 кПа (2атм.) і температурі 132°С-20хв.

7.Протягом проведення стерилізації в автоклаві необхідно провести кільк
"продувок".

8.Після закінчення стерилізації пару із автоклава випустити через випуск
ний кран, на який надіта гумова трубка. Трубка виведена за межі при
міщення.

9.Коли стрілка манометра наблизиться до нуля, відгвинтити гвинти і відкритті
кришку автоклава.

10.Вийняти бікси і викласти на стіл, накритий стерильним простирадлої»

11.Негайно закрити бокові отвори в біксах.

12.Накрити бікси іншим стерильним простирадлом до повного охолод­
ження.

13.Після закінчення стерилізації через випускний кран видалити воду із
автоклава.

14.Термін зберігання простерилізованого матеріалу в біксах з фільтром —
20 діб, без фільтра — 3 доби.

г^ГГЕРИЛІЗАШЯ В ПОВІТРЯНОМУ СТЕРИЛІЗАТОРІ. КОНТРОЛЬ

І Місце проведення:

маніпуляційний, процедурний, перев'язувальний кабінети. /У, Оснащення робочого місця:

1. Сухожарова шафа.

2. Контейнери для інструментів.
///. Попередня підготовка:

- інструменти викласти на решітці сухожарової шафи або у контейнери для

інструментів. IV. Основні етапи виконання навику:

1. Включити сухожарову шафу, при цьому дверцята залишити відкритими.

2.Коли температура в сухожаровій шафі досягне 85-9СРС (див. на термо­
метр шафи), дверцята закрити.

3. Коли температура в сухожаровій шафі досягне 180°С (див. на термо­
метр шафи), почати рахувати час стерилізації. Він повинен бути 60 хв.

4. Через 40 хв. від початку стерилізації шафу вимкнути, але дверцята не
відкривати.

5. Коли температура в шафі знизиться до 85-90°С (див. на термометр
шафи), дверцята шафи відкрити.

6. Стерильним інструментом закрити кришку контейнера.

7. Почекати 15-20 хв. (для охолодження).

8. Вийняти інструменти і викласти на стерильний стіл.

[^стерилізація медичного інструментарію методом кип'яті­ння ( В ЛОМАШНІХ УМОВАХ).

Кип'ятіння, як спосіб стерилізації, допускається лише е тих випадках, коли 'нші методи стерилізації застосовувати неможливо (наприклад, в домашніх умо­вах, коли одним і тим же шприцом роблять ін'єкцію одному пацієнту). '. Місце проведення:

домашні умови. II- Оснащення робочого місця:

1- Електричний або не електричний стерилізатор.

2. Шприци та голки багаторазового використання.

3. Марля.

4. Пінцети — 2 шт.

5. Гачки для виймання сітки — 2 шт.
6- Дистильована вода.

- Попередня підготовка до виконання навику:

~ сітку стерилізатора застелити марлею, вкласти циліндр і поршень шпри-Ца, дві голки, два пінцета, гачки для виймання сітки.

БЛОК 'ОСОБИСТА ГІГІЄНА ПАЦІЄНТІВ І ДОГЛЯД ЗА НИМИ'

БЛОК "ОСОБИСТА ГІГІЄНА ПАЦІЄНТІВ І ДОГЛЯД ЗА НИМИ'

IV. Основні етапи виконання навику:

1.У стерилізатор налити холодну дистильовану воду або водопрові)
воду з гідрокарбонатом натрію із розрахунку на 100 мл води — ;
гідрокарбонату натрію. Шприци та голки повинні бути повністю зану
У воді.

2.Закрити кришку і вімкнути електричний стерилізатор {якщо стери
тор не електричний, поставити на вогонь плитки).

3.Кип'ятити 45хв. з моменту закипання води.

4.Через 45 хв. стерилізатор вимкнути.

5.Збирання стерильного шприца провести згідно з правилами, описан
в навику "В", блок "Парентеральне введення лікарських препаратів"