Основной метод лечения – хирургические операции.

Введение в предмет

Хирургия – раздел медицины, изучающий заболевания, основным методом лечения которых является операция.

Хирургические заболевания (основные виды патологий хирургии): Травмы. Воспалительные заболевания (те, при которых воспаление выступает на стадию нагноения). Опухоли. Паразитарные заболевания. Пороки развития. Смежные заболевания (например, язвы желудка лечат терапевты, при осложнении – хирургическое вмешательство).

Классификация хирургических операций:

ü По видам:

Ø Диагностические. Биопсия – основной метод (забор кусочка ткани). Гистологическое исследование – обследование кусочка ткани. При лечебной операции делают экстренную биопсию: операция продолжает с учётом результатов биопсии. Пункционная биопсия – прокалывание тканей насквозь до повреждённой ткани.

Ø Лечебные.Все остальные операции.

ü По срочности выполнения:

Ø Экстренные – необходимо проводить до 2 ч от поступления пациента в клинику.

Ø Срочные – необходимо проводить не позже 2 сут от момента поступления пациента в клинику.

Ø Плановые – срок выполнения не ограничен. Самая безопасная.

ü По выздоровлению:

Ø Радикальные.Излечивает пациента полностью. Болезнь может возобновиться только при осложнениях.

Ø Паллиативные.Не достигается излечения, а улучшает качество жизни пациента. Проводят неоперабельным больным. Так е может проводиться как этап подготовки к радикальной операции.

ü По количеству этапов:

Ø Одномоментные.За один раз выполняется процесс лечения.

Ø Многомоментные.За 2 и более этапов выполняется процесс лечения.

ü По количеству операций:

Ø Сочетанные (симультанные).Две или более операций проводятся одновременно, двумя и более бригадами хирургов (например, на желудок и ноги).

Ø Комбинированные.Проводятся несколько операций, одной бригадой хирургов, но в одной области (например, на печень и желудок).

ü По типу:

Ø Типичные.Выполняются «по учебнику». Порядок действий один и тот же для всех.

Ø Атипичные.Разные варианты проведения операции, разные подходы.

ü По наличию входных ворот инфекции:

Ø Закрытые.При которых не разрезают ткани и не проникают в них (например, при переломах).

Ø Открытые.Если делается разрез или пункция.

ü Специальные:

Ø Микрохирургические –с использованием микроскопа.

Ø Эндоскопические – с использованием эндоскопов (лапароскопия – в брюшной полости, торакоскопия – в грудной полости, цистоскопия – в мочевом пузыре, дуоденоскопия – в 12-персной кишке и т.д.)

Ø Эндоваскуляторные – внутрисосудистые.

ü По повторению:

Ø Повторные. При забытии инструментария в полостях тела. При осложнениях (разошлись швы).

Ø Неповторные

ü По степени инфицированности:

Ø Чистая (асептическая) – проводится в стерильном органе, с соблюдением асептики.

Ø Условно чистая – нет полной гарантии стерильности.

Ø Условно инфицированная – при воспалительных процессах. Риск гнойных осложнений после операции.

Ø Инфицированная (гнойная) – если есть в теле гнойник. Нужен отток гноя. Не допускать того, чтобы гной попал в полости и на другие органы.

Этапы операции:

ü Хирургический доступ.Создаётся доступ к месте оперирования (разрез, пункция). Д.б.minтравматичен. На этом этапе так же останавливают кровотечение (кровь, оставленная в ране – питательная среда для микробов).

ü Хирургический приём.Основной этап (удаление, сшивание, рассекание).

ü Ушивание раны.Восстановление того, что было разрушено во время доступа. Перед ушиванием обязательно проверить, не осталось ли в ране или полости чужеродных материалов, за это отвечает м/с.

Виды работы м/с на Х.О:Постовые м/с: уход за пациентами. Процедурные м/с: инъекции, капельницы.М/с перевязочной: две перевязочные (чистая и гнойная), перевязки д.б. спланированы с учётом инфицированности пациентов. Операционная м/с.

Асептика и антисептика

Пути попадания инфекции в хирургии:Экзогенный (из внешней среды). Эндогенный (из внутренней среды) – гнойное осложнение.

Антисептика –комплекс мероприятий, направленный на борьбу с микробами и инфекциями в ране или в организме; борьбу с интоксикацией организма; повышением защитных сил организма (иммунитета).

Виды:

ü Механическая.Очищение тканей от того, что содержит микробы (воспаление, изменение тканей). Удаление инородных тел и гноя.

ü Физическая.В основе лежат физические законы.Направлена на то, чтобы создать в ране неблагоприятные условия для размножения и жизни микрорбов и инфекций. Излучения: УФ (бактерицидная лампа), рентгенотерапия, ультразвук, лазерное излучение. Гиперборическаяоксигенация (удаление анаэробов). Открытое лечение ран. Холод и тепло. УВЧ (процедура ультра-высокой частоты). Электрофорез. Дренирование раны (создаётся сообщение с внешней средой). Введение в рану стерильной марли, для повышения впитывания гноя пропитывают 10% раствором NaCl или 25% раствором магнезии. Применение сорбентов.

Дренирование, виды дренажей:

Ø Пассивный.Вводится в рану трубка, через которую жидкость вытекает.

Уход:

Ø Активный.К наружному концу вводимой трубки присоединено устройство, в котором отрицательное давление, оно вытягивает жидкость (активная аспирация).

Уход:

Ø Проточно-промывной.В рану вводится жидкость по одной трубке (антисептические средства, АБ), а по второй эта жидкость с содержимым раны вытекает.

ü Химическая.Использование веществ, которые обладают бактерицидным (уничтожение микробов) или бактериостатическим (остановка размножения микробов) действием.

Виды химических антисептиков:

Ø Дезинфицирующие: Альдегиды (формалин – сильный яд, лизоформ – мыльно-спиртовой раствор для уборки помещений). Фенолы (карболовая кислота).

Ø Антисептические средства: Для наружного применения в процессе лечения. Галоидные препараты (хлорамин, раствор Люголя). Окислители (протаргол, сурьма, Н₂О₂, KMnO₄). Красители (бриллиантовая зелень, метиленовая синь).

Ø Химиотерапевтические:Синтетические АБ. Сульфаниламидные препараты (стрептоцид). Нитрофурановые препараты (фурацилин).

ü Биологическая.Повышение защитной силы организма. Несинтетические АБ: чувствительность, устойчивость, тропность (как выделяется АБ.Пути: желчевыводящие, почки, кишечник) – учитываются эти действия АБ. Учитывают антагонизм. Побочные действия: аллергия; токсические АБ (нефротоксичные, ототоксичные, гепатотоксичные); дизбактериоз; кандидамикоз. Бактериофаги – содержат вирусы, пожирающие бактерии (антистафилококковые, антистрептококковые). Сыворотки (противостолбнячные, антирабическая – против бешенства). Анатоксины (антистафилококковые, столбнячные). Переливание крови. Протеолитические ферменты (энзимотерапия) – ферменты, которые разжижают гной (трипсин – от животных; стрептокиназа – из бактерий; папаин – из растений). Экстракорпорольные методы очистки организма от токсинов (гемосорбция, гемодиализ).

ü Смешанная.

Асептика –комплекс мероприятий, обеспечивающий непопадание микробов в операционную рану. Профилактический метод. «Всё, что касается раны, д.б.стерильным».

Пути попадания инфекции в рану:

ü Воздушно-капельный.Уборка в операционной:

Ø Предварительная.Утром, перед началом операции. Протирание антисептическим раствором всех поверхностей.

Ø Текущая.В процессе операционного дня (промежуточная уборка).

Ø Заключительная.После окончания операционного дня.

Ø Генеральная.Тщательная уборка 1 р/нед.

Антисептические средства:1% хлорамин. 3% Н₂О₂. 0,2% дезоксон. 2% дихлор и т.д.

Бактерицидные лампы на 2-3 часа после заключительной и генеральной уборки.

В операционной желательно установить вентиляционную проточную систему с фильтрами.

Зоны операционных:

Ø Операционная.Стерильная зона.

Ø Зона строгого режима.Предоперационная, где медперсонал обрабатывает руки, надевает экипировку, здесь находится наркозное помещение.

Ø Зона ограниченного режима.Здесь располагается персонал, который не участвует в операции в данный момент, а так же хранится инструментарий, ещё не стерильный. Лаборатория срочных анализов.

Ø Зона общебольничного режима.Разрешён доступ персоналу с других отделений, а так же родители пациентов.

Операционная м.б.чистой и гнойной.При составлении списка операций, учитывают инфицирование пациентов и их состояния.

Хлопковая или бумажная одежда, не шерстяная, на обувь бахилы, маска (меняется 1р/2ч). Без крайней необходимости не разговаривать во время операции, если кто-либо из медперсонала кашляет или чихает, то он не участвует в операции.

ü Контактный. Основной источник: руки медперсонала, инструментарий, перевязочный материал, постельное и нательное бельё. Аподактильный метод – нет контакта рук с раной. Контактная стерилизация: в результате стерилизации не должны ухудшаться свойства того, что стерилизуется; д.б. безопасна; д.б. достигнута гибель всей флоры. Современные асептические использования:

Ø Физические методы стерилизации.

v Обжигание.

v Кипячение.

v Автоклавирование (стерилизация паром под давлением).Чаще располагается в ЦСО.Изделия из ткани: t⁰max – 132⁰С, 2 атм, 20 мин. Пластик, резина: щадящий режим, в биксе, 100⁰С, 11 мин.

v Сухожаровая стерилизация.Шкафы:t⁰ до 160-200⁰С. Стерилизуют в основном Ме. Может располагаться в операционной.

v Лучевая стерилизация.Гама-, и бета-лучи, протоны, изотопы кобальта и цезия. Производится только в промышленных условиях (при изготовлении одноразового материала), может стерильным храниться до 5 лет.

v Ультразвуковая стерилизация.Источник: кристалл кварца. Инструментарий погружается в ванну с дезраствором и пропускают ультразвуковые волны. Так можно стерилизовать руки.

v Стерилизация инфракрасными лучами.В вакуумной среде. Инструментарий нагревается до 280⁰С в течение 7 мин. Затем туда запускают N, который не создаст угрозу взрыва для охлаждения и предотвращения окисления инструмента.

v Плазменная стерилизация.

Ø Химические методы стерилизации.

v Газовая.Проводится в специальных герметичных камерах. Используют пары формалина или окись этилена. Процесс идёт от 6 ч. до 2 сут. Инструмент не портится. Окись этилена взрывоопасна. Метод применяется в стационаре.

v Антисептическими растворами.Холодная стерилизация. Этиловый спирт 96%. 6% раствора Н₂О₂. Хлоргексидин. Спиртовой раствор первомура (смесь Н₂О₂ с муравьиной кислотой).Во всех растворах инструментарий выдерживают 2-3 ч, в Н₂О₂ – 6 ч.

ü Имплантационный.Внедрение инфекции. Через шовный материал. Стерилизация: кипячение в течение 15 мин. в растворе первомура; автоклавирование при давлении 2 атм. 20 мин., а после стерилизации хранить в 96% спирте.

Выполнение контроля стерильности:

ü Непрямые методы.Индикаторы.

ü Прямые методы.Бактериологические исследования.

Мероприятия по профилактике госпитальной инфекции:

ü Сокращения койко-дня.

ü Разделение потока больных.

ü Дезинфекция матрацев, подушек, одеял и т.д.

ü Медперсоналу не краситься, не носить украшения и т.д.

Эндогенные инфекции: лечение инфицированной раны параллельно с заболеванием человека.

Подготовка рук к операции.

Медицинские перчатки, которые участвуют в операции в быту тоже должны защищать кожу от повреждений и травм. Медработнику запрещают участвовать в операции, если на его руках порезы, гнойнички, лак на ногтях.

Классический вариант подготовки рук к операции:

ü Механическая обработка, при которой смывают микробов с поверхности кожи, раскрывает поры.

ü Химическая обработка, при которой уничтожаются микробы, оставленные на коже или в глубине.

ü Дубление кожи,например, с помощью спирта – закрытие пор.

Современные кожные антисептики очень сильные, они уже содержат дубящее вещество => 2, 3 этапы объединяются. В современном варианте 2 этапа: механический и химический.

Механический.Руки моют тёплой водой из-под крана с мылом в определённой последовательности. Моют от кончиков пальцев до локтя. Руки на весу, ни к чему не прикасаются. Вытереть стерильным полотенцем или салфеткой.

Химический.Обработка первомуром (H2O2 + муравьиная кислота): рецептура С-4, разводится в тазу для 10 человек, готовится и используется в день операции. Хлоргексидин разводится в стеклянной посуде 12,5 ml 20% хлоргексидина + 500 ml70% этилового спирта = 0,5% хлоргексидин, салфетки или тампоны пропитываются в растворе и обрабатываются ими руки до локтя по 2-3 мин. АХД – 2000 и АХД – 2000 СПЕЦИАЛЬ наливать на мытые руки 5 ml раствора в ладошку, втирать до локтя дважды. АХД – 3000 содержит в себе различные растворы.

Подготовка к стерилизации:

ü Перевязочного материала.

Весь материал делается из марли, все края подворачиваются внутрь.

Салфетки складываются стопкой по 10-20 штук в зависимости от размера и перевязываются полоской марли или бинтом.

Тампоны так же, как и салфетки.

Шарикиузелком сворачиваются в салфетку по счёту.

Турунды (полосочки) сматывают в клубок, либо стопочкой по счёту.

Помазки (накрученная ватка на палочку). Подготовленные к стерилизации упаковки закладываются в бикс.

Автоклавирование – 2 атм. – 20 мин. – 132⁰С.

ü Операционного белья.

Полотенца складываются вчетверо, а после в рулончик.

Простыни пополам-поперёк, пополам-вдоль (вчетверо). Кладём на стол и загибаем внутрь на ¹/₃ ту сторону, где края, а поверх загибаем, где сгиб. Полученную полоску скатывают не туго в рулон, начиная с краёв простыни.

Халат хирургический.Проверить завязки на спине и рукавах. Положить изнаночной стороной на стол. В правый карман положить пояс. Рукава вдоль. Закрыть полами. Загнуть внутрь воротник. Перегнуть халат пополам. Начиная от подола, не туго скатать в рулон.

Контроль стерилизации.

ü Прямой метод:

Ø Бактериологический метод.Прямо отвечает есть ли микроб или его нет на той поверхности, которую мы проверяем. Берётся мазок, посев на п.с. Этот метод используется для контроля СЭР в лечебных учреждениях, потому что он не позволяет определить, можно ли сейчас использовать предмет (стерилен он или нет).

ü Непрямой метод:

Ø С помощью индикаторов.Меняют цвет. При закладке светлые – 120⁰С слегка песочного цвета – 132⁰С светло-коричневые – 180⁰С тёмно-коричневые (почти чёрные).

Ø С помощью химических веществ.Они запаиваются в ампулки, закладываются в бикс. При достижении нужнойt⁰ вещество расплавляется и меняет цвет. Бензойная кислота при 120⁰С до стерильности серо-голубая, а после цвет сливы.Мочевинапри 132⁰С до стерилизации розовая, после вишнёвого цвета. Тиомочевина, янтарная или виннокаменная кислота при 180⁰С до стерилизации белые, после жёлто-зелёные. Контрольное вещество обязательно подбирают с нужнойt⁰плавления.

Ø С помощью термо-временных индикаторов.Самоклеящаяся клеёнка, которая прикрепляется на упаковку или бикс, а после прикрепляется в журнал, где регистрируется стерилизация. ИТПС-120 – в автоклаве, до стерилизации салатовая, после чёрная. ИТПС-132 – в автоклаве, до стерилизации розовая, после фиолетово-коричневая. ИТСВ-180 – сухожаровой шкаф, до стерилизации голубая, после тёмно-серая (почти чёрная).

Надевание стерильного халата:

ü На себя.М/с д.б. в маске и колпаке, стерильный бикс д.б. на подставке, подготовленный к работе. – Подготовить руки. – Открыть крышку бикса ножной педалью, руки ниже пояса не опускать. – Проверить индикатор стерильности. – Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню, чтобы она закрывала края бикса снаружи. – Вынуть халат из бикса, взять сбоку другой рукой, не касаясь инструмента и вернуть инструмент в стерильный лоток. – Взять рукой за верхнюю часть и отпустить так, чтобы он развернулся, ничего не касаясь. – Развернуть внутренней стороной к себе. – Обе руки вдеть в рукава одновременно. – Санитарка берёт за внутреннюю сторону халата, не касаясь наружной стороны, поправляет его и завязывает тесёмки. – М/с завязывает рукава, оборачивая тесёмки вокруг запястья, кончики не заправляет за манжет халата к телу. – М/с достаёт из правого кармана пояс и подаёт его санитарке так, чтобы она смогла его завязать не касаясь рук м/с и халата. – Санитарка завязывает пояс сзади.

ü На врача.М/с д.б. в стерильном халате и перчатках. – Достаёт из бикса стерильный халат щипцами для белья. - Разворачивает его наружной стороной к себе, а внутренней к врачу так, чтобы он мог продеть обе руки в рукава. – Набросить халат на плечи. – Сзади завязывает операционная санитарка. – Врач вынимает пояс и подаёт санитарке, чтобы она не касалась руками халата. – Санитарка завязывает халат. – М/с подаёт перчатки.

Надевание стерильных печаток:

ü На себя.М/с д.б. в маске, колпаке, стерильном халате и с подготовленными руками. – Крышку бикса открыть нажатием педали, вынуть упаковку перчаток и положить на стерильный стол. – Стерильным пинцетом раскрыть упаковку, развернуть. – Левой рукой взять правую перчатку за отворот манжета с внутренней стороны. – Надеть перчатку на руку не расправляя манжеты. – 4 пальца руки в перчатки заводим под манжет левой перчатки. – Надеть перчатку. – Манжеты отвернуть на рукава халата.

Если пальцы попадают не на своё место, поправить их можно, когда обе руки в перчатках.

Перчатки снимать так, чтобы кожа не касалась загрязнённой поверхности перчаток.

ü На врача.М/с д.б. в стерильном халате и перчатках, врач д.б. в халате. – Подвести по 4 пальца под манжеты перчаток, растянуть и подать врачу так, чтобы манжеты перчаток закрывали манжеты халата. – Шариком со спиртом обработать перчатки на руках.

Виды перчаток:

ü Синтетические. - Латексные.

ü Опудренные. - Неопудренные.

ü Диагностические. - Хирургические.

ü Стерильные. - Нестерильные.

Все перчатки д.б. прочными, не обладать аллергичностью, химически стойкие, комфортные (эластичные, с хорошей чувствительностью.

Средства для дезинфекции и стерилизации:

ü Лизоформин–3000.Применяется для дезинфекции и стерилизации ИМН. ИМН погружают на 1 ч. Для дезинфекции 1,5, 0,75, 2%, для стерилизации 8%.

ü Бланизол.Для ПСО ИМН, эндоскопов 1% раствор. Можно добавлять в Лизоформин-3000, для того, чтобы усилить его свойства.

ü Дезоформ.Для дезинфекции ИМН из любого материала 1, 3, 5%.

ü Лизанол.Кожный антисептик.

ü Хлорапин.Обработка всего. В таблетках и гранулах.

ü Амидин.Кожный антисептик. Для обработки рук, ОП, мест инъекций, медицинских перчаток, обуви.

Накрытие стерильного стола для перевязочного кабинета:

Оснащение:Бикс с 5 стерильными простынями; бикс со стерильной клеёнкой; стерильный лоток с инструментарием; щипцы для белья; 2 корнцанга; 2 цапки.

Алгоритм:

ü Застелить стол стерильной клеёнкой в 1 слой в направлении от себя.

ü Ножной педалью открыть крышку бикса. Проверить индикатор. Щипцами для белья отогнуть выстилающую простыню.

ü Достать щипцами 1 простыню. Развернуть в 1 слой. Поверх клеёнки так, чтобы она максимально закрывала ножки стола, но не касалась пола.

ü 2 простынь в 2 слоя. Так, чтобы она свисала с края стола на 20-25 см.

ü 3 простынь в 2 слоя. Так, чтобы свисала с края стола на 10 см.

ü 4 простынь так же как 3.

ü 5 простынь в 1 слой. Так, чтобы перекрыла край 2 простыни.

ü Корнцанги наложить на края 5 простыни на уровне углов стола.

ü Поднимаемпростынь за корнцанги и складываем гармошкой на дальнем конце стола в направлении от себя к себе. Последнее направление на себя.Кладёмкорнцанги кольцами друг к другу.

ü Захватываем цапками 2 слоя 4 простыни и 1 слой 3. Складываем гармошкой поверх корнцангов. Цапкикладём кольцами друг к другу.

ü На поверхность кладём всё необходимое для перевязки. Берём цапки и перекрываем. Берём корнцангииперекрываем.

Основы трансфузиологии

Учение о группах крови.В эритроцитах человека находятся агглютиногены (АВ), а в плазме агглютинины (αβ). Они образуют 4 группы крови:

I αβ 33,5% людей

II Aβ 37,8% людей

III Bα 20,6% людей

IV AB 8,1% людей

Ни в одной группеА не встречается с α и В с β. При переливании крови такую встречу допустить нельзя, если она произойдёт, то наступит реакция агглютинации (склеивания). Прим: α + А, β + В – можно!

При переливании крови:

ü Определяется донорство.

ü Определяется АВ донора.

ü Определяется произошла ли встреча.

Учение о резус-факторе.Rh⁺ - белок. В крови у 85% людей. Rh не меняется в течение всей жизни. Находится в эритроцитах, там же, где АВ. По АВ в плазме есть АТ αβ, а у Rh их нет. Они могут появиться, если человеку с Rh^- перельют кровь с Rh⁺.

Сенсибилизация (повышенная чувствительность) –при переливании Rh⁺ вRh^-. Вторая встреча приведёт к анафилактическому шоку.

Главное правило переливания крови– переливать одногрупную и иоднорезусную кровь!

Мероприятия перед переливанием крови:

ü Определение показаний и противопоказаний.

ü Определение группу и Rh у реципиента.

ü Подбор необходимой крови.

ü Пригодность крови к переливанию.

ü Заполнение системы для переливания.

ü Проведение пробы на совместимость.

ü Способ переливания.

ü Соблюдение асептики.

Показания к переливанию:Острая кровопотеря. Шок. Тяжёлые операции. Кровотечения. Сепсис. Интоксикация. Диагнозы, при которых необходимо переливание.

Противопоказания к переливанию:Острый инфаркт миокарда. Острая сердечно-лёгочная недостаточность. Гипертоническая болезнь. Активный туберкулёз. Острая недостаточность почечная и печёночная. Пороки сердца. Диагнозы, запрещающие переливание.

Определение группы крови.Сведения из различных документов (паспорт, выписка из истории болезни) о группе крови не являются достоверными. Достоверными являются только лабораторные исследования, которые проводятся перед каждым переливанием.

Существуют различные методы определения группы крови. Один из них – метод по стандартным сывороткам.

Приготовить:

ü Планшетку с заводской маркировкой.

ü Набор стандартных сывороток.

ü Пипетки для крови и для физраствора.

ü Стеклянные палочки.

ü Флакон с физраствором.

ü Песочные часы на 5 мин.

Алгоритм:

ü В ячейки ряда, где написано «серия I» капнуть сыворотку I серии I,II,IIIгруппы в соответствующие ячейки. Капли диаметром примерно 1 см.

ü В ячейки ряда, что написано «серия II» капнуть сывороткуII серииI,II,III группы в соответствующие ячейки. Это нужно для проверки результата реакции агглютинации, которая производится в I серии. Если результат не совпадает, то исследование проводится повторно.

ü Исследуемая кровь при помощи пипетки помещается в каждую ячейку.Капли диаметром 1 мм. Сыворотки в 10 р. больше, чем крови. 10:1.

ü Стеклянной палочкой смешиваем в каждой ячейке сыворотку и кровь. К каждой ячейке своя палочка, чтобы кровь и сыворотка не смешивались.

ü Ставим песочные часы на 5 мин.

ü Слегка покачивая планшетку, наблюдаем за реакцией агглютинации. Там, где реакция произошла, на фоне прозрачной сыворотки образуются кучки склеенных эритроцитов, а где её нет – капли однородные.

ü В те ячейки, где произошла реакция 1-2 капли физраствора. Он необходим, чтобы отличить истинную агглютинацию от ложной. После физраствора ждать 5 мин. Ложную агглютинацию не учитываем в конечном результате.

ü Если агглютинация не произошла, то I группа. Если произошла с сывороткой Iи III группы, а соII нет, тоII группа. Если с сывороткойI иII, а сIII нет, тоIII группа. Если произошла с сывороткамиI,II,III группы, то предполагаем, чтоIV группа.

ü Берём сыворотку IV группы и капаем в 7 ячейку. Производим определение. Если реакция не произошла, то у человекаIV группа крови.

Чтобы определить возможные ошибки при определении группы крови надо:

ü Не пользоваться стандартными сыворотками плохого качества. Проверить, чтобы этикетка была чёткой, типографской, без исправлений от руки.

ü Цвет сыворотки и цвет полоски должен соответствовать группе крови. I - бесцветная;II – синяя;III – красная;IV – ярко-жёлтая.

ü Не прикасаться к каплям сывороток разных групп одной и той же пипеткой (палочкой) с кровью.

ü Не допустить, чтобы исследовательский материал из одних ячеек затекал в другие.

ü Выдерживать необходимое соотношение сыворотки и крови.

ü Выдерживать необходимое время для реакции агглютинации.

ü Не забывать в капли, где произошла агглютинация добавлять физраствор.

ü Не пользоваться не остывшей после стерилизации планшеткой.

ü Не проводить исследование, если в помещении t⁰ выше 25⁰C или ниже 15⁰С.

ü Не проводить исследование при плохом освещении.

Определение Rh.

Rh необходимо определять перед каждым переливанием.Самый простой способ – с помощью универсальных реагентов.

Приготовить:

ü Пробирку.

ü Стандартный универсальный реагент.

ü Физраствор.

ü Шприц.

ü Пипетку для крови.

ü Песочные часы на 5 мин.

Алгоритм:

ü На дно пробирки капаем 1 каплю исследуемой крови.

ü Добавить 1 каплю реагента.

ü Встряхнуть (перемешать).

ü Рукой катаем по горизонтальной поверхности не менее 3 мин. (либо помещаем в специальный аппарат), чтобы содержимое растеклось по стенкам пробирки.

ü Добавляем 2-3 mlфизраствора.

ü Закрываем пробирку. 2-3 раза спокойно перевернуть.

ü Посмотреть пробирку на свет. Если видны крупные хлопья, значит произошла реакция агглютинации =>Rh⁺. Если нет реакции – Rh^-.

Пригодность крови к переливанию.Контейнер (флакон) с кровью д.б. герметичным. Д.б. этикетка с цветной пометкой, которой соответствует определённая группа крови: дата взятия крови; фамилия донора и врача, который брал кровь; № контейнера (флакона). Визуально оценить флакон (контейнер), в норме кровь должна разделиться на 3 слоя: внизу красный слой осевших эритроцитов; сверху желтовато-прозрачная плазма; между ними тонкий слой в 1-2 мм.лейкоцитов и тромбоцитов.

Если плазма мутная - это говорит об инфицировании крови => не пригодна к переливанию. Если всё одинаково красного цвета – произошёл гемолиз => не пригодна. Если есть сгустки => не пригодна.

Пробы на совместимость:Ставятся перед каждым переливанием.

ü На индивидуальную совместимость (по группам).

Ø Донорская кровь свежая или из холодильника. От реципиента кровь 3-5 ml из локтевой вены в сухую пробирку с фамилией реципиента.

Ø На 3 мин. ставим кровь реципиента в центрифугу, чтобы очели эритроциты.

Ø Пипеткой берём сыворотку реципиента (плазму).

Ø На толстое стекло капаем 2-3 кап.сыворотки реципиента. Добавляем 1 кап.донорской крови. Соотношение 10:1.

Ø Смешиваем стеклянной палочкой. Через 5 мин. смотрим результаты.

Проведение гемотрансфузии.

ü Делается клинический анализ крови и ОАМ пациента.

ü Кровь должна 40-45 мин. постоять при комнатнойt⁰.

ü Переливание делается через систему с фильтром с соблюдением асептики.

ü U переливания 40 кап/мин.

ü Нельзя переливать из одного контейнера двум реципиентам. Нельзя из одного контейнера переливать часть в один день, а часть в другой тому же пациенту.

ü Во время и после переливания следить за состоянием реципиента и наблюдать не появятся ли признаки несовместимости.

ü Запись в истории болезни после переливания крови делает врач:Показания к переливанию. Дату проведения, время начала. Способ и метод. Данные с этикетки: фамилия донора, группу и Rh донора, № контейнера (флакона), дату заготовки. Группу и Rh реципиента. Результат проб на совместимость. Состояние пациента каждые 3 ч.: пульс, АД, t⁰, цвет первой порции мочи (если нет, то провести катетеризацию) в конце 1 сут.

ü При отсутствии жалоб и нармальных анализов на 3 сут. Пациент м.б. выписан.

Введение в предмет

Хирургия – раздел медицины, изучающий заболевания, основным методом лечения которых является операция.

Основной метод лечения – хирургические операции.

Классификация хирургических операций:

ü По видам:

Ø Лечебные.Все остальные операции.

ü По срочности выполнения:

Ø Экстренные – необходимо проводить до 2 ч от поступления пациента в клинику.

Ø Срочные – необходимо проводить не позже 2 сут от момента поступления пациента в клинику.

Ø Плановые – срок выполнения не ограничен. Самая безопасная.

ü По выздоровлению: