Определение фекального загрязнения воды по коли-индексу.
Коли-индекс — количественные показатели фекального загрязнения воды, пищевых продуктов, почвы и других объектов окружающей среды, основанные на исследовании содержания в них кишечной палочки.
Коли-индекс — количество кишечных палочек, обнаруживаемое на 1 л жидкости. Для определения коли-индекса используют метод мембранных фильтров. Сущность метода мембранных фильтров заключается в фильтровании определенных объемов исследуемой жидкости (или твердого вещества, разведенного в воде) через мембранные фильтры №2 или №3, на которых задерживаются бактерии. Фильтры переносят на чашки со средой Эндо, инкубируемые при t° 37°, а затем исследуют выросшие на поверхности фильтра темно-красные с металлическим блеском, розовые и прозрачные колонии. Из колоний каждого типа готовят мазки и окрашивают их по Граму. Колонии разных типов проверяют на оксидазную активность, которая должна быть отрицательной. Бесцветные и розовые колонии дополнительно засевают на полужидкую среду с глюкозой и индикатором, на которой в течение 24-часовой инкубации при t° 37° должны образовываться кислота и газ. Для определения коли-индекса подсчитывают выросшие на фильтре колонии кишечной палочки и затем проводят перерасчет на 1 л.
29)заражение эксперемент-х животных(биол.метод)-в\б
Экспериментальное заражение лабораторных животных производится с целью:
- выделения из исследуемого материала чистой культуры возбудителя болезни,
- определения вида бактерий при диагностике болезни, т.е. идентификации;
- определения вирулентности;
- испытания на эффективность вакцин и лечебных сывороток.
Принцип метода:
А)Заражение-в/б
Б)оснащение: 1.исс.материал.(ЧК)
2. лаб.животное- белая мышь
3. инструменты.
Ход работы: 1. Приготовить взвесь исс.культуры
2. набрать взвесь в шприц (2мл)
3. зафиксировать животное в положении брюшком вверх, головой вниз под углом 45гр, диафрагма смещается к гр. Полости
4.проколоть левую паховую обл. перпендикулярно и вводить под углом 45гр. 0,5-1мл. перед введением кожу обработать спиртом и йодом, после тоже самое.
5. животное промаркировать.
30) метод выявления ф. верулентности, адгезивности, капсулообр-я, аг-инг. Фагоцитоза.
А)Вирулентность определяют путем выявления факторовпатогенности, заражения экспериментальных животных, культур ткани или на экспериментальных моделях.
В настоящее время для определения вирулентностистараются не использовать лабораторных животных (в связи с высокой стоимостью исследования и по этическим соображениям). С этой целью широко применяются другие методы определения вирулентности заражение культур тканей,куриных эмбрионов, культур простейших.
Б)Тест на адгезины. В адгезии бактерий принимают участие различные компоненты оболочки. Это свойство выявляют по способности исследуемого микроорганизма сорбироваться на различных эукариотических клетках (эритроциты, энтероциты) или других частицах (латекс). Еще один метод обнаружения адгезинов связан с их использованием в качестве антигенов в серологических реакциях. У эшерихий адгезивные свойства часто определяют по их способности агглютинировать эритроциты.
В лунки планшетов вносят по 50 мкл 4%-й суспензии отмытых эритроцитов морской свинки, 1%-й раствор D-маннозы, суспензию исследуемых бактерий с концентрацией клеток 109/мл. Параллельно ставят реакцию в отсутствие маннозы. Результат учитывают через 30...60 мин. Положительная реакция — склеивание и оседание эритроцитов в виде «зонтика». Торможение агглютинации маннозой обозначают как маннозочувствительную ГА (гемагглютинация), отсутствие ингибирования — как маннозорезистентную ГА.
В)Метод выявления капсулообразованияinvitro
Для изучения капсулообразованияinvitro делают посевы нескольких капель исходной испытуемой взвеси в среду Государственного контрольного института медицинских биологических препаратов им. Тарасевича (ГКИ) и ставят в термостат при 37 °C.
Через 30 - 120 минут начинается капсулообразованиеinvitro. Следует считать, что через 16 - 18 часов все или абсолютное большинство B. anthracis, если таковые находятся в исследуемом материале, образуют на среде ГКИ капсулу.
Для наблюдения за капсулообразованием мазки из культур со среды ГКИ после подсыхания и фиксации в течение 15 минут метанолом окрашивают 5 - 10 минут синькой Леффлера и просматривают в микроскопе (х900). Микробы окрашиваются в синий цвет, а капсула - в розовый.