Средства и методы дезинфекции и утилизация инфекционного материала

Патологический материал, культуры МБТ, полученные при посеве, предметные стекла, контейнеры, лабораторная посуда, ватно-марлевые и резиновые пробки, средства индивидуальной защиты, оборудование должны быть дезинфицированы, а еще лучше – стерилизованы после их использования. Термином стерилизация обозначают полное уничтожение всех микроорганизмов, тогда как под дезинфекцией понимают уничтожение патогенных микроорганизмов. Для стерилизации обычно используют высокую температуру, а для дезинфекции – обработку химическими веществами. Метод замораживания-оттаивания не пригоден для уничтожения микроорганизмов, в том числе микобактерий.

Все поверхности и оборудование в лаборатории должны рассматриваться как потенциально опасные в плане их загрязнения инфекционным материалом, поэтому их следует регулярно мыть и обрабатывать соответствующим образом.

Дезинфицирующие средства

Для уборки помещений, обеззараживания бактериологического стола, защитной одежды персонала, лабораторной посуды, посевов, рук, оборудования лаборатории используют дезинфицирующие средства, оказывающие микобактерицидное действие. Использование новых средств дезинфекции допускается только после их регистрации в Министерстве здравоохранения. Использование материалов и средств личной гигиены, раздражающих кожу, запрещается.

Время инактивации микроорганизмов дезинфицирующими средствами зависит от количества микроорганизмов, которые должны быть уничтожены, вида дезинфицирующего средства и его концентрации, а также от количества органических примесей.

В бактериологических лабораториях лучше всего использовать дезинфицирующие средства, содержащие фенолы, гипохлориты, спирты, формальдегиды, иодофоры или глютаровый альдегид. Выбор дезинфектантов обычно определяется тем, какие субстраты необходимо будет дезинфицировать. Не следует использовать «антисептики с приятным запахом». Не следует ошибочно полагать, что дезинфицирующие средства, пригодные для уничтожения других микроорганизмов, в равной мере будут эффективны и в отношении микобактерий. Большое количество имеющихся в продаже дезинфицирующих средств не обладают активностью против микобактерий или действуют на них незначительно. В равной мере неэффективны четвертичные аммониевые соединения в обычно рекомендуемых концентрациях. Слабые водные растворы перекиси водорода также не оказывают дезинфицирующего действия.

Фенол следует использовать в концентрации от 2 до 5%, время экспозиции должно составлять не менее 15–30 минут – в зависимости от вида подлежащего дезинфекции клинического материала и его количества (объема). Очень удобно обрабатывать рабочие поверхности бумажными салфетками или полотенцами, смоченными раствором фенола. Это сводит к минимуму потенциальную опасность случайно разлитого биологического материала.

Гипохлорит следует применять в концентрации от 1 до 5%, а экспозиция должна составлять 15–30 минут – в зависимости от вида и объема материала, подлежащего дезинфекции. Раствор гипохлорита (5%-й) дает хороший эффект при обработке материала, содержащего органические примеси, так как он обладает лизирующим действием.

Глютаровый альдегид не требует предварительного разведения, однако при его использовании к раствору необходимо добавлять активатор. Глютаровый альдегид обычно выпускают в виде 2%-го раствора, а активатором является бикарбонат. Глютаровый альдегид дает хороший эффект при его использовании для дезинфекции рабочих поверхностей и стеклянной посуды. Активированный раствор должен быть использован в течение двух недель после его приготовления; при помутнении раствора его выливают.

Спирты – обычно 70%-й этиловый (метилированный) спирт или пропанол – используют в смеси с песком для обработки бактериологических петель; кроме того, спиртовые растворы применяют для дезинфекции рабочих поверхностей и полок. Рекомендуется использовать спирт вместо воды для уравновешивания центрифужных пробирок. При загрязнении рук очень эффективна их обработка 70%-м изопропиловым спиртом с последующим тщательным мытьем.

Препараты иодофоров следует применять в концентрации от 3 до 5%, время должно составлять 15–30 минут – в зависимости от вида и объема материала, подлежащего обработке. Иодофоры полезно использовать при обработке поверхностей, контаминированных разбрызганной жидкостью, и для мытья рук.

Все перечисленные выше дезинфицирующие растворы обладают определенным токсическим действием, поэтому их неправильное применение может привести к одышке, появлению кожных сыпей или развитию конъюнктивита. Однако при правильном использовании в соответствии с инструкциями производителей эти растворы безопасны и эффективны.

В лаборатории должен хранится как минимум недельный запас дезинфицирующих средств. Вновь поступающие на склад серии дезинфицирующих средств необходимо контролировать на содержание действующего вещества.

Все необходимые средства и растворы для проведения дезинфекции должны постоянно находиться в лаборатории в достаточном количестве. На ёмкости с дезинфицирующим раствором должно быть указано его название, концентрация и дата приготовления. Дезинфицирующие растворы готовит лаборант, за качеством их приготовления следит врач.

Дезинфицирующий раствор должен быть свежим – его готовят заново каждый день; не следует хранить разбавленный дезинфицирующий раствор, так как при этом он быстро утрачивает свою антибактериальную активность.