Листериозная селективная среда FDA/IDF-FIL

(по прописи Merck).

Казеиновый пептон 17,0 г/л
Пептон Sojmeal 3,0 г/л
D+ глюкоза 2,5 г/л
Хлористый натрий 5,0 г/л
КН2РО4 2,5 г/л
Дрожжевой экстракт 6,0 г/л
РН – 7,3  

Среда LEB

Триптикасоевый бульон 1000,0 мл
Экстракт дрожжей 6,0 г/л
К2НРО4 2,5 г/л

Автоклавировать 15 минут при 121°C. Перед применением добавить (после стерилизации фильтрацией) в объеме 0,5% раствор

Акрифлавина-HCl 3,0 мл/л
Налидиксовой кислоты 8,0 мл/л
Раствор 1% циклогексамида в этаноле 40% 5,0 мл/л

Селективно-обогащенная среда для листерий

(по прописи Rodriquez et. al., 1985).

Пептон 5,0 г/л
Неопептон 5,0 г/л
Порошок «Лаб-Лемко» 10,0 г/л
Рамноза 2,0 г/л
Хлористый натрий 50,0 г/л
Na2HPO4 · 2H2O 53,22 г/л
КН2РО4 1,35 г/л
Налидиксовая кислота 0,05 г/л
Трипановый голубой 0,08 г/л

Селективная среда PAL CAM

(по прописи Merck).

Пептон 23,0 г/л
Крахмал 1,0 г/л
Хлористый натрий 5,0 г/л
Агар-агар 13,0 г/л
Эскулин 0,8 г/л
Аммоний железо (III) сульфат 0,5 г/л
D-маннит 10,0 г/л
Феноловый красный 0,08 г/л
Глюкоза 0,5 г/л
Хлористый литий 15,0 г/л
рН – 7,0  

Селективная среда для выделения листерий (PAL CAM)

(по прописи Netten et. al., 1989).

Представляет собой Columbia-агар (кровяной агар) с содержанием:

Глюкозы 0,05%
Полимиксина В 0,001%
Акрифлавина 0,0005%
Хлорида лития 1,5%
Цефтазидима 0,002%
Эскулина 0,08%
Аммоний железо (III) сульфат 0,05%
Маннита 1,0%
Фенолового красного 0,008%

(колонии серо-зеленые с черным, с впалым центром и черным ободком на вишнево-красном фоне среды).

Селективная среда для листерий

(по прописи Lachica, 1990).

Седечно-мозговой агар «Дифко», содержащий:

Хлористого лития 0,5%
Глицина 1,0%
Цефтазима 50,0 мкг/мл

(колонии с синеватым оттенком)

Селективная среда для листерий

(по прописи Leighton, 1979).

Триптознофосфатный бульон с

Ацетатом таллия 200,0 мкг/л
Налидиксовой кислоты 50,0 мкг/л

Селективная среда CNPA

(по прописи Jay, 1987).



Триптон 20,0 г
Хлористый натрий 10,0 г
Д-глюкоза 5,0 г
Дрожжевой экстракт 2,0 г
ТРИС 7,0 г
Агар 15,0 г
1,2-циклогексанедион 3,0 г
Налидиксовая кислота 45,0 мкг
Фенилэтиловый спирт 1,0 мл
Дистиллированная вода 1000,0 мл

рН – 8,2

Селективная среда

(по прописи Lucas et. al., 1990).

Агар с переваром бычьего сердца и мозга «Дифко» 52,0 г/л
Хлорид лития 15,0 г/л
Эскулин 0,75 г/л
Акрифлавин гидрохлорид 0,005 г/л
Дистиллированная вода 1000,0 мл

Смесь автоклавируют при +121°C 15 минут, охлаждают до 45°C и добавляют:

Стерильный цитрат железа аммония 70 мл 0,7%
Теллурит калия 10 мл 2,0%
Полимиксин В 10 мл 0,1%
Натриевая соль нефтазидимапентагидрата 10 мл 0,2%

На разлитую в чашки Петри среду проводят посевы, инкубируют при +37°C, затем чашки с колониями охлаждают до +4°C и добавляют 8 мл расплавленного и охлажденного до +45°C агара верхнего слоя, в состав которого входят:

Сухой бульон из перевара бычьего сердца и мозга «Дифко» 37,0 г/л
Агар 3,0 г/л
Хлористый натрий 8,0 г/л
Суспензия эритроцитов барана 50,0 мл/л

Через 14 часов инкубации при 30°C появляется зона гемолиза.

Листериозная селективная среда FEINDT

(по прописи Merck).

Триптоза 20,0 г/л
D-глюкоза 1,0 г/л
Хлористый натрий 5,0 г/л
Витамин В1 0,005 г/л
Трипафлавин 0,01 г/л
Налидиксовая кислота 0,04 г/л
Агар-агар 13,0 г/л

рН - 7,4

Селективная среда для выделения листерий Oxford

(по прописи Merck)

Пептон 23,0 г/л
Крахмал 1,0 г/л
Хлористый натрий 5,0 г/л
Агар-агар 13,0 г/л
Эскулин 1,0 г/л
Аммонии железо (III) сульфат 0,5 г/л
Хлористый литий 15,0 г/л

рН – 7,0

Каждая из указанных питательных сред не лишена недостатков. Часть этих методов, способов и питательных сред дает отличные результаты в некоторых лабораториях, но не во всех. Это можно объяснить различным качеством применяемых химикатов.

Бактерии рода Erysipelothrix

Род Erysipelothrix — прямые или слегка изогнутые палочковидные бактерии (0,8-2,5´0,2-0,4 мкм), имеющие тенденцию образовывать длинные нити длиной до 60 и более мкм; послед­ние могут утолщаться и содержать гранулы. Неподвижны, спор и капсул не образу­ют; хемоорганотрофы; грамположительны, но в старых культурах могут изменять отношение к окраске по Граму. Факультативные анаэробы; каталазоотрицатель­ны; ферментативная активность слабая — ферментируют глюкозу и некоторые угле­воды с образованием кислоты; на кровяных средах дают a-гемолиз. Широко распростране­ны в природе, паразиты рыб и теплокровных.

Типовой вид — Erysipelothrix rhusiopathiae; Такахаши с соавт. (Takahashi et. аl., 1987) описали второй вид — Е. tonsillarum, отличающийся от первого лишь степенью гомологии ДНК. Все штаммы данного вида принадлежат к одному серовару и маловирулентны для свиней.

Erysipelothrix rhusiopathiae открыли Пастер и Тюилье (1882), Леффлер (1886) как возбудитель рожи свиней и Розенбах (1884) как возбудитель ползучей эритемы Бейкера или эризипелоида. Идентичность обоих микроорганизмов установил Вилявин (1955).

Распространение

Erysipelothrix rhusiopathiae устойчив во внешней среде и распростра­нен повсеместно; на разлагающихся органических субстратах может сохраняться месяца­ми, а в трупах — до года. При высушивании погибает в течение 3 недель, на прямом солнеч­ном свету — за 12 суток; кипячение убивает его в течение 3-5 минут. Неустойчив к действию дезинфектантов. Резервуар — грызуны, насекомоядные и домашние животные, включая птиц (куры, утки, индейки, голуби и др.). Эризипелоид животных — природно-очаговая нетрансмиссивная инфекция; возбудитель может сапрофитировать на различных сортах мяса и рыбы, человек заражается контактным путем, а заболеваемость носит выраженный профессиональный или бытовой характер. В группу риска относят рыбаков, лесорубов, работников боен, ветеринаров и т.д.

Наши рекомендации